| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 1 前言 | 第11-23页 |
| ·面粉和面制品色泽的影响因素 | 第11-12页 |
| ·多酚氧化酶（PPO）的研究进展 | 第12-15页 |
| ·PPO 的生理生化特性 | 第12-13页 |
| ·PPO 的分布与活性变化 | 第13页 |
| ·PPO 活性检测 | 第13页 |
| ·PPO 活性的影响因素 | 第13-14页 |
| ·小麦籽粒PPO 活性的分子标记研究 | 第14-15页 |
| ·PPO 基因的遗传及基因克隆 | 第15页 |
| ·基因表达载体构建策略 | 第15-18页 |
| ·构建表达载体的重要性 | 第15-16页 |
| ·启动子的选用 | 第16页 |
| ·转录终止子 | 第16页 |
| ·内含子的选用 | 第16-17页 |
| ·增强子的选用 | 第17页 |
| ·目标基因的修饰 | 第17页 |
| ·筛选标记基因的利用和删除 | 第17-18页 |
| ·RNA 干扰研究进展 | 第18-20页 |
| ·RNA 干扰的作用机理 | 第19页 |
| ·RNA 干扰的应用 | 第19-20页 |
| ·转基因技术研究进展 | 第20-22页 |
| ·基因枪法 | 第21页 |
| ·花粉管通道法 | 第21页 |
| ·农杆菌转化研究进展 | 第21-22页 |
| ·本研究的目的意义 | 第22-23页 |
| 2 试验材料与方法 | 第23-31页 |
| ·试验材料 | 第23页 |
| ·试验方法 | 第23-31页 |
| ·农杆菌介导体系探索 | 第23-24页 |
| ·piPPO 载体构建 | 第24-28页 |
| ·LB 和YEP 培养基的制备 | 第24页 |
| ·大肠杆菌感受态的制备 | 第24-25页 |
| ·热击转化 | 第25页 |
| ·质粒DNA 的提取 | 第25-26页 |
| ·酶切 | 第26页 |
| ·DNA 片段胶回收 | 第26-27页 |
| ·目的片段和载体连接 | 第27页 |
| ·农杆菌感受态的制备 | 第27-28页 |
| ·农杆菌转化 | 第28页 |
| ·piPPO 农杆菌介导转化小麦 | 第28-31页 |
| ·接种 | 第28页 |
| ·取胚 | 第28页 |
| ·去胚轴 | 第28-29页 |
| ·继代筛选 | 第29页 |
| ·再生 | 第29页 |
| ·转化中所使用培养基的配制 | 第29-30页 |
| ·基因组DNA 的提取 | 第30页 |
| ·PCR 检测 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-38页 |
| ·农杆菌介导体系探索 | 第31-34页 |
| ·piPPO 农杆菌表达载体构建 | 第34-37页 |
| ·中间载体pBluippo、pBluippopBIOS 的构建 | 第34-36页 |
| ·最终载体piPPO 的构建 | 第36-37页 |
| ·piPPO 农杆菌介导转化小麦 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| ·农杆菌转化体系的探索 | 第38-39页 |
| ·piPPO 农杆菌表达载体构建 | 第39-40页 |
| ·piPPO 农杆菌载体转化小麦 | 第40页 |
| 5 结论 | 第40-42页 |
| ·优化农杆菌转化体系 | 第40-41页 |
| ·构建得到 piPPO 农杆菌载体 | 第41页 |
| ·得到含有 piPPO 的转基因小麦植株 | 第41-42页 |
| 6 参考文献 | 第42-53页 |
| 7 致谢 | 第53-54页 |
| 8 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第54-55页 |
| 硕士学位论文内容简介及自评 | 第55页 |