| 中文摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第10-31页 |
| ·玉米遗传转化研究进展 | 第10-12页 |
| ·转基因受体系统 | 第10-11页 |
| ·愈伤组织再生系统 | 第11页 |
| ·原生质体再生系统 | 第11页 |
| ·种质系统 | 第11-12页 |
| ·直接分化再生系统 | 第12页 |
| ·遗传转化方法 | 第12-16页 |
| ·基因枪法 | 第12-13页 |
| ·农杆菌介导法 | 第13-15页 |
| ·原理与应用 | 第13-14页 |
| ·影响因素 | 第14-15页 |
| ·花粉管通道法 | 第15页 |
| ·其它转化方法 | 第15-16页 |
| ·玉米转基因技术的应用 | 第16-17页 |
| ·油菜素内酯研究进展 | 第17-30页 |
| ·油菜素内酯的发现、结构和生物合成途径 | 第17页 |
| ·油菜素内酯的生理效应 | 第17-18页 |
| ·生物合成及相关突变体 | 第18-26页 |
| ·生物合成途径 | 第19-20页 |
| ·油菜素内酯合成中相关的突变体 | 第20-25页 |
| ·BR 生物合成的调节 | 第25-26页 |
| ·反馈调节 | 第25页 |
| ·光调节 | 第25-26页 |
| ·信号传导及其相关突变体 | 第26-29页 |
| ·信号传导 | 第26页 |
| ·信号途径中突变体 | 第26-29页 |
| ·BR 相关基因工程 | 第29页 |
| ·DWAF4 基因 | 第29-30页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 2 材料与方法 | 第31-36页 |
| ·试验材料 | 第31页 |
| ·受体材料 | 第31页 |
| ·菌种、质粒 | 第31页 |
| ·试剂 | 第31页 |
| ·常用培养基和溶液的配制 | 第31-33页 |
| ·YEB 培养基 | 第31页 |
| ·基本培养基 | 第31-32页 |
| ·常用溶液配制 | 第32页 |
| ·试验所需试剂及溶液配制 | 第32-33页 |
| ·质粒DNA 的提取 | 第32页 |
| ·植物基因组DNA SDS 法提取缓冲液 | 第32页 |
| ·植物总RNA 提取 | 第32-33页 |
| ·试验方法 | 第33-36页 |
| ·受体系统建立和优化 | 第33页 |
| ·幼胚长度筛选 | 第33页 |
| ·盾片朝向 | 第33页 |
| ·组培温度 | 第33页 |
| ·浸染和筛选 | 第33-34页 |
| ·农杆菌培养和浸染菌液浓度 | 第33页 |
| ·筛选剂巴龙霉素筛选浓度确定 | 第33-34页 |
| ·浸染 | 第34页 |
| ·筛选 | 第34页 |
| ·分化和炼苗移栽 | 第34页 |
| ·转化苗的PCR 检测 | 第34-35页 |
| ·RT-PCR 检测 | 第35-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-43页 |
| ·幼胚受体系统的建立 | 第36-41页 |
| ·幼胚长度对愈伤诱导的影响 | 第36-38页 |
| ·培养基组分(2,4-D 和NAA)比对幼胚出愈率的影响 | 第38页 |
| ·继代次数对幼胚出愈率的影响 | 第38-39页 |
| ·组培温度对幼胚日均膨大率和出愈率的影响 | 第39-40页 |
| ·盾片朝向对诱导愈伤的影响 | 第40页 |
| ·筛选剂巴龙霉素筛选浓度的确定 | 第40-41页 |
| ·农杆菌浸染过程控制 | 第41-42页 |
| ·农杆菌适宜浸染浓度的确定 | 第41页 |
| ·共培养方式对过度浸染率的影响 | 第41-42页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第42-43页 |
| ·转化植株的PCR 检测 | 第42-43页 |
| ·转化植株的RT-PCR 检测 | 第43页 |
| 4 讨论 | 第43-49页 |
| ·玉米受体系统的建立与优化 | 第43-46页 |
| ·愈伤筛选 | 第46页 |
| ·转化植株分化、移栽 | 第46-49页 |
| 5 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 攻读硕士期间发表论文情况 | 第63-64页 |
| 硕士学位论文内容简介及自评 | 第64页 |