中文摘要 | 第1-9页 |
英文摘要 | 第9-11页 |
第一章 原生质体形成及再生的最佳条件 | 第11-25页 |
1 材料和方法 | 第11-13页 |
1.1 材料 | 第11-13页 |
1.2 方法 | 第13页 |
1.2.1 原生质体的制备及再生 | 第13页 |
1.2.2 计数观察方法 | 第13页 |
2 结果与讨论 | 第13-23页 |
2.1 SD-142菌的生长曲线 | 第13-14页 |
2.2 青霉素对SD-142菌原生质体形成的及再生的影响 | 第14-16页 |
2.2.1 不同生长期加入青霉素对SD-142菌原生质体形成的影响 | 第14-15页 |
2.2.2 不同浓度的青霉素作用不同时间对SD-142菌生长的影响 | 第15-16页 |
2.3 SD-142菌对甘氨酸的敏感性 | 第16-17页 |
2.4 青霉素与甘氨酸对SD-142菌原生质体形成的影响 | 第17页 |
2.5 溶菌酶作用的最佳条件 | 第17-20页 |
2.5.1 不同浓度的溶菌酶对SD-142菌原生质体形成率和再生率的影响 | 第17-18页 |
2.5.2 溶菌酶作用不同时间对SD-142菌原生质体形成和再生的影响 | 第18-19页 |
2.5.3 EDTA对溶菌作用效果的影响 | 第19-20页 |
2.6 再生培养基的选择 | 第20页 |
2.7 高渗透压培养基稳定剂对原生质体再生率的影响 | 第20-21页 |
2.8 SD-142菌原生质体形成和再生最佳条件的综合实验 | 第21页 |
2.9 原生质体形成和再生的微显观察 | 第21-23页 |
3 讨论 | 第23-24页 |
参考文献 | 第24-25页 |
第二章 诱变株的选育、酶学性质和脱毛条件的研究 | 第25-50页 |
1 材料和方法 | 第26-32页 |
1.1 材料 | 第26-29页 |
1.2 方法 | 第29-32页 |
1.2.1 原生质体的植被及再生 | 第29页 |
1.2.2 技术路线 | 第29页 |
1.2.3 原生质体的紫外诱变处理 | 第29页 |
1.2.4 UV-NTG复合处理 | 第29-30页 |
1.2.5 筛选方法 | 第30页 |
1.2.6 蛋白酶活力测定 | 第30-32页 |
2 结果 | 第32-46页 |
2.1 蛋白酶活力测定标准曲线的制作 | 第32-33页 |
2.2 原生质体及菌体的紫外诱变处理 | 第33-34页 |
2.2.1 SD-142菌及其原生质体对UV的敏感性 | 第33-34页 |
2.2.2 不同剂量的UV照射对SD-142菌原生质体的诱变效果 | 第34页 |
2.3 LH-22菌的UV-NTG复合诱变 | 第34-35页 |
2.4 CH-17菌的热孢子处理选育 | 第35页 |
2.5 菌株的稳定性实验 | 第35页 |
2.6 酶学性质 | 第35-40页 |
2.6.1 酶反应最适温度 | 第35-36页 |
2.6.2 酶作用的最适pH | 第36-37页 |
2.6.3 酶的热稳定性 | 第37页 |
2.6.4 CaCl_2(0.01mol/L)和glytcine(1mol/L)存在下酶的热稳定性研究 | 第37-38页 |
2.6.5 抑制剂对酶活力的影响 | 第38-39页 |
2.6.6 金属离子对酶活力的影响 | 第39页 |
2.6.7 与各种商业去污剂的相容性 | 第39-40页 |
2.7 脱毛实验 | 第40-46页 |
2.7.1 脱毛酶液浓度确定 | 第40-41页 |
2.7.2 脱毛最适pH的确定 | 第41-42页 |
2.7.3 脱毛温度的确定 | 第42-43页 |
2.7.4 NaCl浓度对酶脱毛的影响 | 第43-44页 |
2.7.5 防腐剂对酶脱毛的影响 | 第44页 |
2.7.6 CH-17-9菌株与枯草杆菌AS1.398脱毛效果的比较 | 第44-45页 |
2.7.7 脱毛液中还原糖含量的变化 | 第45-46页 |
2.7.8 脱毛过程中的胶原水解物 | 第46页 |
3 讨论 | 第46-49页 |
3.1 原生质体对诱变剂的敏感性 | 第46-47页 |
3.2 UV-NTG复合诱变的效果与特点 | 第47页 |
3.3 酶性质研究 | 第47-48页 |
3.4 脱毛研究 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-50页 |
结论 | 第50-51页 |
文献综述 | 第51-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
在读期间科研成果简介 | 第69-70页 |
声明 | 第70页 |