| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 目录 | 第12-17页 |
| 缩略语注释 | 第17-19页 |
| 第1章 绪论 | 第19-45页 |
| ·引言 | 第19页 |
| ·DCs的生物学特性及其在药理活性中的研究 | 第19-32页 |
| ·DCs的来源和分布 | 第19-20页 |
| ·DCs的供体来源及培养方法 | 第20-23页 |
| ·DCs的分化成熟过程 | 第23-24页 |
| ·DCs的生物学功能 | 第24-30页 |
| ·中药多糖对DCs的调控作用 | 第30-32页 |
| ·巨噬细胞的生物学特性及其在药理活性中的研究 | 第32-37页 |
| ·巨噬细胞的生物学特性 | 第32-33页 |
| ·中药多糖对巨噬细胞的免疫调节作用 | 第33-37页 |
| ·车前子的国内外研究概况 | 第37-42页 |
| ·车前子的资源分布 | 第37-38页 |
| ·车前子主要化学成分 | 第38-39页 |
| ·车前子多糖药理学研究进展 | 第39-42页 |
| ·本研究的目的意义、主要研究内容和创新性 | 第42-45页 |
| ·目的意义 | 第42-43页 |
| ·主要研究内容 | 第43-44页 |
| ·本研究的创新性 | 第44-45页 |
| 第2章 植物化学物对DCs前体细胞增殖及毒性研究 | 第45-55页 |
| ·引言 | 第45-46页 |
| ·实验材料与仪器 | 第46-48页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·有关溶液配制 | 第47页 |
| ·实验仪器 | 第47-48页 |
| ·实验方法 | 第48-50页 |
| ·植物化学物的配制 | 第48页 |
| ·DCs前体细胞的分离 | 第48-49页 |
| ·细胞形态学评价 | 第49页 |
| ·MTT法检测DCs前体细胞的生长 | 第49-50页 |
| ·流式细胞仪检测细胞早期凋亡 | 第50页 |
| ·数据处理 | 第50页 |
| ·结果与分析 | 第50-53页 |
| ·植物化学物对DCs前体细胞形态的影响 | 第50-52页 |
| ·植物化学物对DCs前体细胞生长的影响 | 第52-53页 |
| ·细胞早期凋亡检测结果 | 第53页 |
| ·讨论 | 第53-54页 |
| ·本章小结 | 第54-55页 |
| 第3章 DCs的体外扩增培养、纯化及鉴定 | 第55-67页 |
| ·引言 | 第55页 |
| ·实验材料与仪器 | 第55-56页 |
| ·实验材料 | 第55-56页 |
| ·有关溶液配制 | 第56页 |
| ·实验仪器 | 第56页 |
| ·实验方法 | 第56-59页 |
| ·小鼠骨髓来源DCs的体外诱导及培养 | 第56-57页 |
| ·台盼蓝拒染实验检测细胞存活率 | 第57页 |
| ·小鼠骨髓来源DCs的纯化 | 第57-58页 |
| ·形态学鉴定 | 第58页 |
| ·流式细胞检测细胞表型 | 第58-59页 |
| ·数据处理 | 第59页 |
| ·结果与分析 | 第59-64页 |
| ·细胞形态学观察 | 第59-62页 |
| ·细胞表面分子表达水平检测 | 第62-64页 |
| ·讨论 | 第64-66页 |
| ·本章小结 | 第66-67页 |
| 第4章 植物化学物对DCs表型及功能影响的初步探讨 | 第67-80页 |
| ·引言 | 第67页 |
| ·实验材料与仪器 | 第67-68页 |
| ·实验材料 | 第67-68页 |
| ·有关溶液配制 | 第68页 |
| ·实验仪器 | 第68页 |
| ·实验方法 | 第68-71页 |
| ·鲎试剂检测样品细菌内毒素含量 | 第68-69页 |
| ·形态学观察 | 第69页 |
| ·MTT法检测样品对DCs增殖的影响 | 第69-70页 |
| ·免疫染色和流式细胞分析 | 第70页 |
| ·吞噬实验 | 第70页 |
| ·数据处理 | 第70-71页 |
| ·结果与分析 | 第71-78页 |
| ·各植物化学物的内毒素含量 | 第71-72页 |
| ·各植物化学物对DCs形态的影响 | 第72-74页 |
| ·各植物化学物对DCs增殖的影响 | 第74-75页 |
| ·各植物化学物对DCs表达MHC Ⅱ分子的影响 | 第75-76页 |
| ·各植物化学物对DCs吞噬功能的影响 | 第76-78页 |
| ·讨论 | 第78-79页 |
| ·本章小结 | 第79-80页 |
| 第5章 大粒车前子多糖对DCs表型及吞噬功能的影响 | 第80-94页 |
| ·引言 | 第80页 |
| ·实验材料与仪器 | 第80-81页 |
| ·实验方法 | 第81-82页 |
| ·样品内毒素的去除验证实验 | 第81页 |
| ·实验分组 | 第81页 |
| ·细胞形态鉴定 | 第81-82页 |
| ·免疫染色和流式细胞分析 | 第82页 |
| ·吞噬实验 | 第82页 |
| ·数据处理 | 第82页 |
| ·结果与分析 | 第82-92页 |
| ·样品内毒素的去除验证实验 | 第82-83页 |
| ·PL-PS,PLP对DCs形态的影响 | 第83-85页 |
| ·PL-PS,PLP对DCs表面分子表达的影响 | 第85-90页 |
| ·PL-PS,PLP对DCs吞噬功能的影响 | 第90-92页 |
| ·讨论 | 第92-93页 |
| ·本章小结 | 第93-94页 |
| 第6章 大粒车前子多糖对DCs分泌功能的调控 | 第94-104页 |
| ·引言 | 第94页 |
| ·实验材料与仪器 | 第94-95页 |
| ·实验试剂 | 第94-95页 |
| ·实验仪器 | 第95页 |
| ·实验方法 | 第95-96页 |
| ·Griess法检测NO | 第95页 |
| ·ELISA法检测细胞因子L-12p70、IL-10及IL-1β | 第95页 |
| ·ELISA法检测趋化因子RANTES | 第95-96页 |
| ·数据处理 | 第96页 |
| ·结果与分析 | 第96-102页 |
| ·PLP对DCs分泌炎症因子NO的影响 | 第96-97页 |
| ·PL-PS,PLP对DCs分泌细胞因子的影响 | 第97-101页 |
| ·PL-PS,PLP对DCs分泌趋化因子RANTES的影响 | 第101-102页 |
| ·讨论 | 第102-103页 |
| ·本章小结 | 第103-104页 |
| 第7章 大粒车前子多糖对DCs刺激T细胞增殖的影响 | 第104-111页 |
| ·引言 | 第104页 |
| ·实验材料与仪器 | 第104-105页 |
| ·实验材料 | 第104-105页 |
| ·实验仪器 | 第105页 |
| ·实验方法 | 第105-107页 |
| ·混合淋巴细胞反应(MLR) | 第105-106页 |
| ·抗原提呈能力检测 | 第106页 |
| ·数据处理 | 第106-107页 |
| ·结果与分析 | 第107-109页 |
| ·PL-PS,PLP对DCs诱导同种异体淋巴细胞增殖能力的影响 | 第107-108页 |
| ·PL-PS,PLP对DCs诱导同基因T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第108-109页 |
| ·讨论 | 第109-110页 |
| ·本章小结 | 第110-111页 |
| 第8章 大粒车前子多糖对DCs趋化作用的影响 | 第111-120页 |
| ·引言 | 第111页 |
| ·实验材料与仪器 | 第111-112页 |
| ·实验试剂 | 第111-112页 |
| ·相关试剂配制 | 第112页 |
| ·实验仪器 | 第112页 |
| ·实验方法 | 第112-116页 |
| ·总RNA的提取 | 第113页 |
| ·总RNA的质量、浓度检测 | 第113页 |
| ·RNA的逆转录体系 | 第113-114页 |
| ·聚合酶链式反应(PCR) | 第114-115页 |
| ·琼脂糖电泳 | 第115页 |
| ·数据处理 | 第115-116页 |
| ·结果与分析 | 第116-118页 |
| ·总RNA的质量、浓度检测 | 第116页 |
| ·PCR产物的电泳结果 | 第116-118页 |
| ·讨论 | 第118-119页 |
| ·本章小结 | 第119-120页 |
| 第9章 大粒车前子多糖对DCs抗SP2/0功能的影响 | 第120-127页 |
| ·引言 | 第120-121页 |
| ·实验材料与仪器 | 第121页 |
| ·实验材料 | 第121页 |
| ·相关试剂配制 | 第121页 |
| ·实验仪器 | 第121页 |
| ·实验方法 | 第121-124页 |
| ·小鼠SP2/0骨髓瘤细胞的培养 | 第121-122页 |
| ·小鼠SP2/0骨髓瘤抗原肽的制备 | 第122页 |
| ·小鼠SP2/0骨髓瘤可溶性抗原负载DCs的诱导培养 | 第122页 |
| ·CTL的诱导及对SP2/0骨髓瘤细胞的特异性杀伤(LDH释放法) | 第122-123页 |
| ·数据处理 | 第123-124页 |
| ·结果与分析 | 第124-125页 |
| ·讨论 | 第125-126页 |
| ·小结 | 第126-127页 |
| 第10章 大粒车前子多糖活化巨噬细胞功能的研究 | 第127-143页 |
| ·引言 | 第127页 |
| ·实验材料与仪器 | 第127-128页 |
| ·实验材料 | 第127-128页 |
| ·有关溶液配制 | 第128页 |
| ·实验仪器 | 第128页 |
| ·实验方法 | 第128-130页 |
| ·RAW264.7细胞传代培养 | 第128页 |
| ·小鼠腹腔巨噬细胞的原代培养 | 第128-129页 |
| ·细胞形态学观察 | 第129页 |
| ·大粒车前子多糖对RAW264.7和腹腔巨噬细胞生长的影响 | 第129页 |
| ·大粒车前子多糖对RAW264.7和腹腔巨噬细胞生成NO的影响 | 第129-130页 |
| ·大粒车前子多糖对RAW264.7细胞表面分子表达的影响 | 第130页 |
| ·大粒车前子多糖对RAW264.7和腹腔巨噬细胞分泌细胞因子的影响 | 第130页 |
| ·数据处理 | 第130页 |
| ·结果与分析 | 第130-141页 |
| ·大粒车前子多糖对RAW264.7和腹腔巨噬细胞细胞形态学观察 | 第130-132页 |
| ·大粒车前子多糖对RAW264.7和腹腔巨噬细胞生长的影响 | 第132-133页 |
| ·大粒车前子多糖对RAW264.7和腹腔巨噬细胞生成NO的影响 | 第133-136页 |
| ·大粒车前子多糖对RAW264.7细胞表面共刺激分子的影响 | 第136-139页 |
| ·大粒车前子多糖对RAW264.7和腹腔巨噬细胞分泌细胞因子的影响 | 第139-141页 |
| ·讨论 | 第141-142页 |
| ·本章小结 | 第142-143页 |
| 第11章 结论 | 第143-145页 |
| 致谢 | 第145-146页 |
| 参考文献 | 第146-160页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第160-161页 |
