| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 缩略词表 | 第12-14页 |
| 第一章 研究背景 | 第14-23页 |
| 1.1 治疗多药耐药的策略 | 第14-17页 |
| 1.1.1 纳米技术 | 第14-15页 |
| 1.1.2 增敏剂 | 第15-17页 |
| 1.2 金纳米笼 | 第17-18页 |
| 1.3 刺激响应性给药系统 | 第18-22页 |
| 1.3.1 酸响应性给药系统 | 第19页 |
| 1.3.2 氧化还原响应性给药系统 | 第19-20页 |
| 1.3.3 酶响应性给药系统 | 第20页 |
| 1.3.4 温度响应性给药系统 | 第20-21页 |
| 1.3.5 光响应性给药系统 | 第21页 |
| 1.3.6 磁场响应性给药系统 | 第21-22页 |
| 1.4 课题的提出 | 第22-23页 |
| 第二章 AuNCs的制备和表征 | 第23-33页 |
| 2.1 材料试剂与仪器设备 | 第23-25页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-26页 |
| 2.2.1 AuNCs的制备 | 第25页 |
| 2.2.2 AuNCs的表征 | 第25-26页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第26-32页 |
| 2.3.1 银立方纳米粒作为模板对AuNCs的影响 | 第26-31页 |
| 2.3.2 氯金酸的浓度对金纳米笼光学性质的影响 | 第31-32页 |
| 2.4 小结 | 第32-33页 |
| 第三章 DBPP@AuNCs的制备,表征和体外释放行为 | 第33-62页 |
| 3.1 材料试剂与仪器设备 | 第34-36页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第34-35页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第35-36页 |
| 3.2 实验方法 | 第36-43页 |
| 3.2.1 Biotin-PEG-PCDA的制备,表征和稳定性研究 | 第36-37页 |
| 3.2.2 DBPP@AuNCs的制备 | 第37-39页 |
| 3.2.3 DBPP@AuNCs的表征和稳定性研究 | 第39-41页 |
| 3.2.4 DBPP@AuNCs光热效应的测定 | 第41-42页 |
| 3.2.5 DBPP@AuNCs体外药物释放行为考察 | 第42-43页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第43-61页 |
| 3.3.1 Biotin-PEG-PCDA的制备、表征和稳定性 | 第43-47页 |
| 3.3.2 DBPP@AuNCs的制备和表征 | 第47-55页 |
| 3.3.3 DBPP@AuNCs的光热效应 | 第55-57页 |
| 3.3.4 DBPP@AuNCs体外药物释放行为 | 第57-61页 |
| 3.4 小结 | 第61-62页 |
| 第四章 DBPP@AuNCs的细胞水平评价 | 第62-110页 |
| 4.1 材料试剂与仪器设备 | 第63-65页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第63-64页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第64-65页 |
| 4.2 实验方法 | 第65-79页 |
| 4.2.1 采用MTT法测定细胞毒性 | 第65-67页 |
| 4.2.2 电感耦合等离子体质谱定量分析金元素含量 | 第67-68页 |
| 4.2.3 流式细胞术定量分析细胞内DOX含量 | 第68-69页 |
| 4.2.4 荧光分光光度计定量分析细胞内DOX的含量 | 第69-70页 |
| 4.2.5 激光共聚焦显微镜定性分析细胞内DOX分布 | 第70-72页 |
| 4.2.6 评价载药纳米粒逆转细胞多药耐药效果 | 第72-73页 |
| 4.2.7 考察NIR光照的影响 | 第73页 |
| 4.2.8 细胞凋亡的测定 | 第73-75页 |
| 4.2.9 细胞活性氧(ROS)的测定 | 第75-76页 |
| 4.2.10 细胞周期的测定 | 第76-77页 |
| 4.2.11 酶联免疫分析(ELISA)测定P-糖蛋白(P-gp)表达量 | 第77-78页 |
| 4.2.12 ATP的影响 | 第78-79页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第79-109页 |
| 4.3.1 细胞对DOX的耐药指数 | 第79-80页 |
| 4.3.2 TD@AuNCs和 Biotin-PEG-PCDA的体外细胞毒性 | 第80-82页 |
| 4.3.3 纳米粒的摄取 | 第82-84页 |
| 4.3.4 纳米粒中DOX在细胞内的释放行为 | 第84-86页 |
| 4.3.5 DOX在细胞内的滞留 | 第86-87页 |
| 4.3.6 DOX在细胞内的分布 | 第87-89页 |
| 4.3.7 CLSM分析纳米粒中DOX在细胞中控制释放行为 | 第89-92页 |
| 4.3.8 CLSM分析DBPP@AuNCs中 DOX的细胞内定位 | 第92-96页 |
| 4.3.9 载药纳米粒逆转多药耐药效果 | 第96-97页 |
| 4.3.10 纳米粒在不同光照条件下的体外细胞毒性 | 第97-99页 |
| 4.3.11 细胞凋亡 | 第99-103页 |
| 4.3.12 活性氧(ROS) | 第103-106页 |
| 4.3.13 细胞周期 | 第106-107页 |
| 4.3.14 P-gp | 第107-108页 |
| 4.3.15 ATP | 第108-109页 |
| 4.4 小结 | 第109-110页 |
| 第五章 BPQD@AuNCs的制备,表征和体外释放行为 | 第110-133页 |
| 5.1 材料试剂与仪器设备 | 第111-112页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第111-112页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第112页 |
| 5.2 实验方法 | 第112-119页 |
| 5.2.1 BPQD@AuNCs的制备 | 第112-114页 |
| 5.2.2 QUR体外分析方法的建立 | 第114-115页 |
| 5.2.3 BPQD@AuNCs的表征 | 第115-117页 |
| 5.2.4 BPQD@AuNCs的稳定性研究 | 第117页 |
| 5.2.5 BPQD@AuNCs体外药物释放行为考察 | 第117-119页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第119-132页 |
| 5.3.1 QUR体外分析方法 | 第119-123页 |
| 5.3.2 BPQD@AuNCs的制备和表征 | 第123-126页 |
| 5.3.3 BPQD@AuNCs的稳定性 | 第126-127页 |
| 5.3.4 BPQD@AuNCs体外药物释放行为 | 第127-132页 |
| 5.4 小结 | 第132-133页 |
| 第六章 BPQD@AuNCs的细胞水平评价 | 第133-164页 |
| 6.1 材料试剂与仪器设备 | 第134-136页 |
| 6.1.1 材料与试剂 | 第134-135页 |
| 6.1.2 仪器与设备 | 第135-136页 |
| 6.2 实验方法 | 第136-145页 |
| 6.2.1 采用MTT法测定细胞毒性 | 第136-137页 |
| 6.2.2 流式细胞术定量分析细胞内DOX含量 | 第137-138页 |
| 6.2.3 激光共聚焦显微镜定性分析细胞内DOX分布 | 第138-139页 |
| 6.2.4 评价载药纳米粒逆转细胞多药耐药效果 | 第139-140页 |
| 6.2.5 细胞凋亡的测定 | 第140-141页 |
| 6.2.6 细胞活性氧(ROS)的测定 | 第141-142页 |
| 6.2.7 细胞周期的测定 | 第142-143页 |
| 6.2.8 酶联免疫分析(ELISA)测定P-糖蛋白(P-gp)表达量 | 第143-144页 |
| 6.2.9 ATP的影响 | 第144-145页 |
| 6.3 实验结果与讨论 | 第145-163页 |
| 6.3.1 DOX与 QUR联合用药的CI值 | 第145-147页 |
| 6.3.2 BPQD@AuNCs的摄取 | 第147-149页 |
| 6.3.3 DOX在细胞内的滞留 | 第149-150页 |
| 6.3.4 DOX在细胞内的分布 | 第150-154页 |
| 6.3.5 载药纳米粒逆转多药耐药效果 | 第154-155页 |
| 6.3.6 细胞凋亡 | 第155-157页 |
| 6.3.7 活性氧(ROS) | 第157-160页 |
| 6.3.8 细胞周期 | 第160页 |
| 6.3.9 P-gp | 第160页 |
| 6.3.10 ATP | 第160-163页 |
| 6.4 小结 | 第163-164页 |
| 全文总结 | 第164-167页 |
| 参考文献 | 第167-179页 |
| 致谢 | 第179-181页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第181-184页 |
