| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 前言 | 第17-30页 |
| 第一节 SCD1调控肿瘤增殖、凋亡的作用以及机制 | 第17-24页 |
| 1.1 SCD的功能和调控 | 第17-18页 |
| 1.2 SCD1和MUFA的升高是肿瘤的生化标志 | 第18-21页 |
| 1.3 SCD1与肿瘤的关系 | 第21-24页 |
| 第二节 神经酰胺促进肿瘤凋亡的机制 | 第24-27页 |
| 2.1 神经酰胺的功能及合成 | 第24-25页 |
| 2.2 神经酰胺和肿瘤细胞凋亡 | 第25-27页 |
| 第三节 SCD1与神经酰胺促进肿瘤凋亡之间的调控关系 | 第27-28页 |
| 第四节 立题依据 | 第28-30页 |
| 第二章 NF-KB信号通路在SCD1抑制诱导细胞凋亡中的作用 | 第30-53页 |
| 1. 前言 | 第30-31页 |
| 2. 材料 | 第31-35页 |
| 2.1 实验细胞系 | 第31页 |
| 2.2 实验试剂 | 第31-33页 |
| 2.3 实验仪器 | 第33页 |
| 2.4 工作液配制 | 第33-35页 |
| 3. 实验方法 | 第35-41页 |
| 3.1 细胞培养 | 第35-36页 |
| 3.2 细胞RNA提取及Real-Time PCR | 第36-38页 |
| 3.3 细胞蛋白提取、定量和蛋白免疫印迹（Western Blot) | 第38-39页 |
| 3.4 RNA-seq测序 | 第39-40页 |
| 3.5 小RNA干扰(SiRNA) | 第40页 |
| 3.6 细胞脂质提取 | 第40-41页 |
| 3.7 LC-MS | 第41页 |
| 3.8 数据处理与统计分析 | 第41页 |
| 4. 实验结果 | 第41-50页 |
| 5. 讨论 | 第50-53页 |
| 第三章 SCD1抑制主要通过抑制内源性单不饱和脂肪酸诱导神经酞胺从头合成 | 第53-64页 |
| 1. 前言 | 第53页 |
| 2. 材料 | 第53-54页 |
| 2.1 实验细胞系 | 第53页 |
| 2.2 实验试剂 | 第53-54页 |
| 2.3 实验仪器 | 第54页 |
| 3. 实验方法 | 第54-57页 |
| 3.1 OA的配置 | 第54-55页 |
| 3.2 CCK8检测细胞增殖情况 | 第55页 |
| 3.3 细胞中的脂质提取 | 第55-56页 |
| 3.4 LC-MS | 第56页 |
| 3.5 细胞中RNA的提取、逆转录和Real-time PCR | 第56页 |
| 3.6 细胞中蛋白的提取、定量以及western blot检测 | 第56-57页 |
| 3.7 数据处理与统计分析 | 第57页 |
| 4. 实验结果 | 第57-63页 |
| 5. 讨论 | 第63-64页 |
| 第四章 SCD1抑制在耐药肿瘤细胞中的作用 | 第64-78页 |
| 1. 前言 | 第64页 |
| 2. 材料 | 第64-65页 |
| 2.1 实验细胞系 | 第64页 |
| 2.2 实验试剂 | 第64-65页 |
| 2.3 实验设备 | 第65页 |
| 3. 实验方法 | 第65-68页 |
| 3.1 细胞培养 | 第65-66页 |
| 3.2 细胞增殖实验 | 第66页 |
| 3.3 细胞RNA的提取以及Rel-time PCR | 第66-67页 |
| 3.4 细胞蛋白的提取以及wertern blot | 第67页 |
| 3.5 LC-MS | 第67-68页 |
| 4. 实验结果 | 第68-76页 |
| 5. 讨论 | 第76-78页 |
| 结论与展望 | 第78-79页 |
| 附录 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
