| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 英文缩写索引 | 第15-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-28页 |
| 1.1 MDSCs(myeloid-derivedsuppressorcells) | 第16-21页 |
| 1.1.1 MDSCs的来源和分类 | 第17页 |
| 1.1.2 MDSCs的增殖与活化 | 第17-18页 |
| 1.1.3 MDSCs的免疫抑制功能 | 第18-19页 |
| 1.1.4 MDSCs与STAT3通路 | 第19-20页 |
| 1.1.5 MDSCs的靶向治疗 | 第20-21页 |
| 1.2 白藜芦醇 | 第21-24页 |
| 1.2.1 白藜芦醇的来源、结构与代谢 | 第21-23页 |
| 1.2.2 白藜芦醇的生物学功能 | 第23页 |
| 1.2.3 白藜芦醇的抗肿瘤机制 | 第23-24页 |
| 1.3 本研究的目的、方法、实验设计及意义 | 第24-28页 |
| 1.3.1 研究目的 | 第24-25页 |
| 1.3.2 研究方法 | 第25页 |
| 1.3.3 实验设计方案 | 第25-27页 |
| 1.3.4 实验意义 | 第27-28页 |
| 第二章 白藜芦醇下调小鼠肺癌移植瘤模型中G-MDSCs细胞比率延缓肿瘤发展 | 第28-41页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-31页 |
| 2.1.1 实验小鼠 | 第28-29页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第29页 |
| 2.1.3 实验耗材和仪器 | 第29-30页 |
| 2.1.4 主要溶液配制 | 第30-31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.2.1 小鼠Lewis肺癌移植瘤模型的建立 | 第31页 |
| 2.2.2 白藜芦醇处理小鼠Lewis肺癌移植瘤模型 | 第31页 |
| 2.2.3 肿瘤生长状况的检测、肿瘤最终重量的测量、小鼠生存情况的监测 | 第31-32页 |
| 2.2.4 流式细胞术(FCM)检测荷瘤小鼠脾脏、肿瘤组织中总MDSCs、G-MDSCs、M-MDSCs细胞的比率 | 第32-33页 |
| 2.2.5 FCM检测荷瘤小鼠脾脏、肿瘤组织和引流淋巴结中CD8+T细胞的比率 | 第33页 |
| 2.2.6 统计学方法 | 第33-34页 |
| 2.3 实验结果 | 第34-39页 |
| 2.3.1 白藜芦醇对荷瘤小鼠皮下肿瘤发展进程的影响 | 第34-36页 |
| 2.3.2 白藜芦醇对荷瘤小鼠体内总MDSCs、G-MDSCs、M-MDSCs细胞比率的影响 | 第36-38页 |
| 2.3.3 白藜芦醇对荷瘤小鼠体内CD8+T细胞比率的影响 | 第38-39页 |
| 2.4 讨论 | 第39-41页 |
| 第三章 白藜芦醇体外促进G-MDSCs凋亡并抑制其向肿瘤组织募集 | 第41-55页 |
| 3.1 实验材料 | 第41-43页 |
| 3.1.1 实验小鼠 | 第41页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第41-42页 |
| 3.1.3 实验耗材和仪器 | 第42-43页 |
| 3.1.4 主要溶液配制 | 第43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-47页 |
| 3.2.1 Lewis荷瘤小鼠模型的建立 | 第43页 |
| 3.2.2 荷瘤小鼠脾脏G-MDSCs的分离及细胞纯度检测 | 第43-44页 |
| 3.2.3 FCM检测白藜芦醇处理后G-MDSCs的凋亡情况 | 第44-45页 |
| 3.2.4 Western-blot检测白藜芦醇处理后G-MDSCs中Bcl-2、Bax、caspase3、cleaved-caspase3的表达情况 | 第45-46页 |
| 3.2.5 Transwell检测白藜芦醇处理后的肿瘤培养上清对G-MDSCs趋化作用的影响 | 第46-47页 |
| 3.2.6 统计学分析 | 第47页 |
| 3.3 实验结果 | 第47-53页 |
| 3.3.1 荷瘤小鼠脾脏G-MDSCs的分离纯度 | 第47-48页 |
| 3.3.2 白藜芦醇对荷瘤小鼠脾脏G-MDSCs凋亡的影响 | 第48-52页 |
| 3.3.3 白藜芦醇处理后的Lewis细胞培养上清对G-MDSCs迁移的影响 | 第52-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-55页 |
| 第四章 白藜芦醇体外对G-MDSCs免疫抑制功能的影响及其机制 | 第55-63页 |
| 4.1 实验材料 | 第55-56页 |
| 4.1.1 实验小鼠 | 第55页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第55页 |
| 4.1.3 实验耗材和仪器 | 第55-56页 |
| 4.1.4 主要溶液配制 | 第56页 |
| 4.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 4.2.1 小鼠Lewis肺癌移植瘤模型的建立 | 第56页 |
| 4.2.2 荷瘤小鼠脾脏G-MDSCs的分离与纯化 | 第56页 |
| 4.2.3 Western-blot检测白藜芦醇处理后G-MDSCs中Arg-1的表达情况 | 第56页 |
| 4.2.4 FCM检测白藜芦醇处理后G-MDSCs中ROS的表达情况 | 第56页 |
| 4.2.5 白藜芦醇处理G-MDSCs后以不同比率与CD8+T细胞共培养 | 第56-57页 |
| 4.2.6 FCM检测共培养体系中CD8+T细胞的增殖情况 | 第57页 |
| 4.2.7 ELISA检测共培养体系中CD8+T细胞分泌颗粒酶B的情况 | 第57-58页 |
| 4.2.8 Western-blot检测白藜芦醇处理后G-MDSCs中p-STAT3的表达情况 | 第58页 |
| 4.2.9 统计学分析 | 第58页 |
| 4.3 实验结果 | 第58-62页 |
| 4.3.1 白藜芦醇对G-MDSCs相关效应分子Arg-1、ROS表达水平的影响 | 第58-59页 |
| 4.3.2 白藜芦醇对G-MDSCs免疫抑制功能的影响 | 第59-61页 |
| 4.3.3 白藜芦醇刺激后对G-MDSCs中STAT3磷酸化水平的影响 | 第61-62页 |
| 4.4 讨论 | 第62-63页 |
| 第五章 结论与展望 | 第63-65页 |
| 5.1 主要结论 | 第63页 |
| 5.2 展望 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第76页 |
