| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-11页 |
| 引言 | 第16-17页 |
| 第一章 综述 | 第17-28页 |
| 1.1 多糖的研究概况 | 第17-24页 |
| 1.1.1 多糖的提取 | 第17-19页 |
| 1.1.2 多糖的除杂 | 第19-20页 |
| 1.1.3 多糖的分离 | 第20-21页 |
| 1.1.4 多糖的结构研究 | 第21-24页 |
| 1.2 红景天多糖的研究进展 | 第24-26页 |
| 1.2.1 红景天多糖的结构研究 | 第24-25页 |
| 1.2.2 红景天多糖的活性研究 | 第25-26页 |
| 1.2.3 红景天多糖的制剂研究 | 第26页 |
| 1.3 本课题研究的目的、意义及内容 | 第26-28页 |
| 1.3.1 本课题研究的目的及意义 | 第26页 |
| 1.3.2 本课题的研究内容 | 第26-28页 |
| 第二章 红景天多糖的分离纯化及理化性质研究 | 第28-39页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第28页 |
| 2.1.2 主要试剂与材料 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-35页 |
| 2.2.1 红景天多糖的提取 | 第29页 |
| 2.2.2 红景天多糖的分离纯化 | 第29-31页 |
| 2.2.3 多糖组分RRP1和RRP2的理化性质测定 | 第31-35页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第35-38页 |
| 2.3.1 红景天多糖的分离 | 第35-36页 |
| 2.3.2 RRP1和RRP2的多糖、蛋白质、糖醛酸的含量 | 第36页 |
| 2.3.3 紫外光谱分析 | 第36-37页 |
| 2.3.4 RRP1和RRP2的分子量测定 | 第37-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 红景天多糖RRP1和RRP2的结构特征研究 | 第39-54页 |
| 3.1 仪器与试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第39-40页 |
| 3.1.2 主要试剂与材料 | 第40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-43页 |
| 3.2.1 红景天多糖RRP1和RRP2的单糖组成 | 第40-41页 |
| 3.2.2 红外光谱分析 | 第41页 |
| 3.2.3 核磁共振分析 | 第41页 |
| 3.2.4 高碘酸氧化与Smith降解 | 第41-42页 |
| 3.2.5 X-射线衍射 | 第42页 |
| 3.2.6 刚果红实验 | 第42-43页 |
| 3.2.7 扫描电子显微镜(SEM)研究 | 第43页 |
| 3.2.8 原子力显微镜(AFM)研究 | 第43页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第43-53页 |
| 3.3.1 红景天多糖RRP1和RRP2的单糖组成分析结果 | 第43-44页 |
| 3.3.2 红外光谱分析结果 | 第44-45页 |
| 3.3.3 ~1H NMR和~(13)C NMR分析结果 | 第45-47页 |
| 3.3.4 高碘酸氧化和Smith降解分析结果 | 第47-49页 |
| 3.3.5 X-射线衍射分析结果 | 第49-50页 |
| 3.3.6 刚果红实验结果 | 第50-51页 |
| 3.3.7 扫描电子显微镜分析结果 | 第51-52页 |
| 3.3.8 原子力显微镜分析结果 | 第52-53页 |
| 3.4 本章小结 | 第53-54页 |
| 第四章 红景天多糖的体外抗氧化活性测定和体内保肝作用的研究 | 第54-66页 |
| 4.1 仪器与试剂 | 第54-56页 |
| 4.1.1 主要仪器 | 第54-55页 |
| 4.1.2 主要试剂与材料 | 第55-56页 |
| 4.1.3 实验动物 | 第56页 |
| 4.2 实验方法 | 第56-59页 |
| 4.2.1 DPPH自由基清除能力测定 | 第56页 |
| 4.2.2 羟基自由基的清除能力测定 | 第56-57页 |
| 4.2.3 超氧阴离子自由基(·O2?)清除能力测定 | 第57页 |
| 4.2.4 四氯化碳(CCl4)诱导小鼠肝损伤实验 | 第57-59页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第59-64页 |
| 4.3.1 DPPH自由基清除能力 | 第59页 |
| 4.3.2 羟基自由基清除能力 | 第59-60页 |
| 4.3.3 超氧阴离子自由基清除能力 | 第60-61页 |
| 4.3.4 RRP1和RRP2对小鼠血清ALT和AST水平的影响 | 第61-62页 |
| 4.3.5 RRP1和RRP2对小鼠肝组织中CAT、SOD、GSH和MDA的影响.. | 第62-63页 |
| 4.3.6 肝脏的组织病理学观察 | 第63-64页 |
| 4.4 本章小结 | 第64-66页 |
| 第五章 红景天多糖RRP1脂质体的制备及其保肝药效评价 | 第66-84页 |
| 5.1 仪器与试剂 | 第66-67页 |
| 5.1.1 主要仪器 | 第66-67页 |
| 5.1.2 主要试剂与材料 | 第67页 |
| 5.1.3 实验动物 | 第67页 |
| 5.2 实验方法 | 第67-72页 |
| 5.2.1 多糖RRP1脂质体(RRP1L)的制备 | 第67-68页 |
| 5.2.2 包封率的测定 | 第68页 |
| 5.2.3 单因素实验 | 第68-69页 |
| 5.2.4 BBD响应面优化处方工艺 | 第69-70页 |
| 5.2.5 红景天脂质体RRP1L的质量评价 | 第70页 |
| 5.2.6 四氯化碳(CCl4)诱导小鼠肝损伤实验 | 第70-72页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第72-82页 |
| 5.3.1 单因素实验结果 | 第72-74页 |
| 5.3.2 响应面优化条件结果 | 第74-76页 |
| 5.3.3 响应面分析 | 第76-79页 |
| 5.3.4 红景天脂质体RRP1L的质量评价 | 第79-81页 |
| 5.3.5 RRP1L对血清ALT和AST水平的影响 | 第81页 |
| 5.3.6 RRP1L对小鼠肝组织中CAT、SOD、GSH和MDA的影响 | 第81-82页 |
| 5.4 本章小结 | 第82-84页 |
| 全文总结 | 第84-87页 |
| 本文创新点 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 攻读硕士期间发表或完成的学术论文 | 第97页 |
