| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-11页 |
| 英文縮略词表 | 第11-12页 |
| 背景介绍 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 实验材料 | 第16-19页 |
| 1. 样本 | 第16页 |
| 2. 试剂盒 | 第16页 |
| 3. 仪器设备 | 第16-17页 |
| 4. 实验试剂 | 第17页 |
| 5. 实验耗材 | 第17-18页 |
| 6. 主要试剂配制 | 第18-19页 |
| 实验方法 | 第19-25页 |
| 实验基本技术路线图 | 第19-20页 |
| 1. 神经元细胞分离 | 第20页 |
| 2. 细胞核提取 | 第20页 |
| 3. 荧光染色 | 第20-22页 |
| 3.1 细胞核间接染色法 | 第20-21页 |
| 3.2 细胞间接染色法 | 第21页 |
| 3.3 细胞和细胞核直接染色法 | 第21-22页 |
| 4. 流式细胞分选 | 第22页 |
| 5. 细胞核处理和收集 | 第22页 |
| 6. RNA提取 | 第22-23页 |
| 6.1 Trizol法提取细胞核RNA | 第22-23页 |
| 6.2 QIAGEN RNeasy Mini Kit提取细胞核RNA | 第23页 |
| 6.3 QIAGEN miRNeasy Mini Kit提取细胞核RNA | 第23页 |
| 7. Agilent 2100 analyzer分析 | 第23-25页 |
| 实验结果 | 第25-33页 |
| 1. 神经元细胞荧光标记 | 第25页 |
| 2. 神经元细胞核的分离和荧光标记 | 第25-28页 |
| 2.1 神经元细胞核分离 | 第26页 |
| 2.2 神经元细胞核荧光染色 | 第26-27页 |
| 2.3 细胞核分选 | 第27-28页 |
| 2.4 流式分选后细胞核形态观察 | 第28页 |
| 3. 人大脑皮质区域神经元比例检测 | 第28-29页 |
| 4. RNA凝胶电泳检测 | 第29-30页 |
| 4.1 人和小鼠脑组织RNA电泳检测 | 第29-30页 |
| 4.2 人和小鼠脑组织细胞核RNA电泳检测 | 第30页 |
| 5. RNA2100分析 | 第30-33页 |
| 5.1 人冻存脑组织RNA 2100分析 | 第30-31页 |
| 5.2 人冻存脑组织细胞核RNA 2100分析 | 第31页 |
| 5.3 新鲜小鼠脑组织RNA2100分析 | 第31页 |
| 5.4 新鲜小鼠脑组织细胞核RNA 2100分析 | 第31-33页 |
| 讨论 | 第33-35页 |
| 结论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-41页 |
| 综述 | 第41-57页 |
| 参考文献 | 第50-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 个人简历 | 第58页 |
