| 中文摘要 | 第4-7页 |
| 英文摘要 | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-15页 |
| 第一部分 | 第15-35页 |
| 1 前言 | 第15-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-25页 |
| 2.1 实验仪器和材料 | 第16-18页 |
| 2.2 常用溶液配制方法 | 第18-19页 |
| 2.3 实验操作步骤 | 第19-25页 |
| 3 结果 | 第25-31页 |
| 3.1 BMMSCs细胞在不同浓度雷尼酸锶干预下细胞增殖情况 | 第25页 |
| 3.2 雷尼酸锶作用下BMMSCs细胞凋亡情况 | 第25-26页 |
| 3.3 BMMSCs细胞在不同浓度雷尼酸锶干预下成脂诱导分化情况 | 第26-28页 |
| 3.4 大鼠骨髓间充质干细胞成脂诱导5天进行PPAR-γ蛋白免疫荧光检测结果 | 第28-29页 |
| 3.5 BMMSCs成脂诱导后PPAR-γ及C/EBP-α蛋白western-blot结果 | 第29-31页 |
| 4 讨论 | 第31-34页 |
| 5 结论 | 第34-35页 |
| 第二部分 | 第35-60页 |
| 1 前言 | 第35-37页 |
| 2 材料与方法 | 第37-47页 |
| 2.1 实验仪器和材料 | 第37-39页 |
| 2.2 常用溶液配制方法 | 第39-40页 |
| 2.3 实验操作步骤 | 第40-47页 |
| 3 结果 | 第47-53页 |
| 3.1 BMMSCs细胞成脂诱导分化3天LC3蛋白免疫荧光结果 | 第47页 |
| 3.2 BMMSCs细胞成脂分化早期应用雷尼酸锶干预后自噬水平改变情况 | 第47-49页 |
| 3.3 应用自噬抑制剂(氯喹)及Akt信号通路抑制剂(API-2)后成脂相关蛋白PPAR-γ的荧光强度变化情况 | 第49-50页 |
| 3.4 BMMSCs成脂分化诱导并且分别在雷尼酸锶,自噬抑制剂CQ和激动剂Rapa,以及Akt抑制剂API-2各干预因素调节干预下,细胞内β-catenin蛋白水平改变情况 | 第50-51页 |
| 3.5 大鼠BMMSCs细胞成脂诱导分化36h,western-blot技术检测Akt/mTOR信号通路及Akt/GSK3-β信号通路相关蛋白变化情况 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-59页 |
| 5 结论 | 第59-60页 |
| 创新性自我评价 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 文献综述 | 第68-91页 |
| 参考文献 | 第81-91页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92-94页 |
| 个人简历 | 第94-95页 |
