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Micromonospora sp.A29遗传操作体系的优化建立及含AHBA合酶基因的次级代谢途径激活

摘要第7-9页
Abstract第9-10页
符号说明及缩写词第11-12页
第一章 文献综述第12-26页
    1.1 小单孢菌及其遗传操作第12-19页
        1.1.1 小单孢菌概述第12-14页
        1.1.2 小单孢菌产生的生物活性物质第14-15页
        1.1.3 小单孢菌的遗传操作第15-19页
            1.1.3.1 小单孢菌的原生质体融合和原生质体转化第16-17页
            1.1.3.2 小单孢菌的噬菌体的转染第17-18页
            1.1.3.3 小单孢菌的电转化第18页
            1.1.3.4 小单孢菌的属间接合转移第18-19页
    1.2 安莎霉素类抗生素概述第19-21页
        1.2.1 安莎霉素类抗生素的分类及生理活性第19-20页
        1.2.2 安莎霉素类抗生素的生物合成第20-21页
            1.2.2.1 安莎霉素类抗生素的合成途径第20页
            1.2.2.2 安莎霉素类抗生素合成起始单元AHBA第20-21页
    1.3 抗生素生物合成的途径特异性调控第21-22页
    1.4 本论文开展思路第22-26页
第二章 小单孢菌遗传操作体系的建立及优化第26-50页
    2.1 实验材料第26-30页
        2.1.1 菌株及质粒第26-27页
        2.1.2 培养基第27-29页
        2.1.3 试剂第29-30页
            2.1.3.1 常用试剂配制第29页
            2.1.3.2 试剂的选购第29-30页
        2.1.4 主要仪器设备和耗材第30页
    2.2 实验方法第30-37页
        2.2.1 A29常用抗生素敏感性测定第30-31页
        2.2.2 A29菌丝体的培养条件优化第31页
        2.2.3 A29菌丝体生长曲线的测定第31-32页
        2.2.4. A29菌丝体OD_(600)-cfu/ml曲线的测定第32页
        2.2.5 A29菌丝体电转化第32-33页
            2.2.5.1 A29电转感受态菌丝体的制备第32-33页
            2.2.5.2 A29菌丝体电转化第33页
        2.2.6 A29菌丝体接合转移体系的构建及优化第33-37页
            2.2.6.1 A29菌丝体接合转移第33-35页
            2.2.6.2 A29菌丝体不同生长状态下接合转移效率的测定第35-36页
            2.2.6.3 不同接合转移培养基条件下接合转移效率的测定第36页
            2.2.6.4 不同接合转移供受比条件下接合转移效率的测定第36页
            2.2.6.5 A29菌丝体不同大小的插入片段接合转移效率的测定第36-37页
            2.2.6.6 多株不同种类小单孢菌于优化条件下接合转移效率测定第37页
    2.3 实验结果与讨论第37-48页
        2.3.1 A29对常用抗生素敏感性测定结果第37-38页
        2.3.2 A29菌丝体的最佳培养条件的确定第38-40页
        2.3.3 A29菌丝体生长曲线第40-41页
        2.3.4 A29菌丝体OD_(600)-cfu/ml(10~5)曲线第41页
        2.3.5 A29菌丝体电转化结果第41-42页
        2.3.6 大肠杆菌-小单孢菌属间接合转移体系的构建及优化结果第42-48页
            2.3.6.1 A29菌丝体接合转移效率的计算方法第42-43页
            2.3.6.2 A29菌丝体最佳生长状态的确定第43-44页
            2.3.6.3 最佳接合转移培养基的确定第44-45页
            2.3.6.4 最佳接合转移供受比的确定第45-46页
            2.3.6.5 不同大小的插入片段对A29菌丝体接合转移效率的影响第46-47页
            2.3.6.6 多株小单孢菌于优化条件下的接合转移效率第47-48页
    2.4 本章总结与展望第48-50页
第三章 含AHBA合成基因的次级代谢途径激活第50-81页
    3.1 实验材料第50-54页
        3.1.1 菌株及质粒第50-51页
        3.1.2 培养基第51页
        3.1.3 试剂第51-53页
            3.1.3.1 常用溶液配制第51-53页
            3.1.3.2 常用试剂盒及其他生化试剂第53页
        3.1.4 主要仪器设备和耗材第53-54页
    3.2 实验方法第54-66页
        3.2.1 本章使用的引物信息第54-57页
        3.2.2 含AHBA合成基因簇克隆的fosmid文库筛选第57-59页
        3.2.3 xzqh12和A29目标基因簇中LuxR基因过表达重组质粒的构建第59-60页
        3.2.4 pSET152-rpoABC整合型重组质粒的构建第60-61页
        3.2.5 目标基因簇中相关基因片段敲除质粒的构建第61-63页
        3.2.6 大肠杆菌-链霉菌属间接合转移(孢子法)第63-64页
        3.2.7 大肠杆菌-小单孢菌属间接合转移(菌丝体法)第64页
        3.2.8 敲除株及过表达菌株的获得及验证第64-65页
        3.2.9 突变株及野生型菌株的发酵及HPLC检测第65-66页
        3.2.10 黑色素报告基因检测ermE~*p在A29中的启动强度第66页
    3.3 实验结果与讨论第66-78页
        3.3.1 xzqh12或A29目标基因簇的获得及分析第66-69页
        3.3.2 xzqh12中含AHBA合成基因的次级代谢途径激活结果第69-73页
            3.3.2.1 xzqh12中含AHBA合成基因的次级代谢途径表达水平的检测第69-71页
            3.3.2.2 xzqh12中含AHBA合成基因的ansa类次级代谢途的激活第71-73页
        3.3.3 A29中含AHBA合成基因的PKS-NRPS杂合途径激活结果第73-78页
            3.3.3.1 A29中含AHBA合成基因NRPS-PKS杂合途径表达水平的检测第74-76页
            3.3.3.2 A29中含AHBA合成基因NRPS-PKS杂合途径的激活第76-78页
    3.4 本章总结与展望第78-81页
附录Ⅰ 相关载体图谱第81-85页
附录Ⅱ A29菌丝体接合转移原始数据第85-88页
附录Ⅲ A29和xzqh12 AHBA合酶基因序列第88-91页
附录Ⅳ 基于PCR targeting的基因敲除原理示意图第91-92页
参考文献第92-100页
致谢第100-101页
学位论文评阅及答辩情况表第101页

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