摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第1章 绪论 | 第12-24页 |
1.1 生物传感器 | 第12-14页 |
1.1.1 生物传感器的基本结构与工作原理 | 第12-13页 |
1.1.2 生物传感器的分类 | 第13页 |
1.1.3 生物传感器的优点 | 第13-14页 |
1.1.4 生物传感器的应用与前景 | 第14页 |
1.2 电化学生物传感器 | 第14-16页 |
1.2.1 电化学生物传感器的原理 | 第14-15页 |
1.2.2 电化学生物传感器的分类 | 第15-16页 |
1.3 电化学生物传感器电极表面的生物材料固定方法 | 第16-18页 |
1.3.1 吸附法 | 第17页 |
1.3.2 包埋法 | 第17页 |
1.3.3 共价键合法 | 第17页 |
1.3.4 化学交联法 | 第17页 |
1.3.5 电化学聚合法 | 第17-18页 |
1.3.6 聚电解质静电吸附组装技术 | 第18页 |
1.3.7 纳米材料固定技术 | 第18页 |
1.4 光学生物传感器 | 第18-21页 |
1.4.1 光学生物传感器的原理 | 第19页 |
1.4.2 光学生物传感器的优点与常见光学生物传感器 | 第19页 |
1.4.3 荧光生物传感器 | 第19-20页 |
1.4.4 化学发光生物传感器 | 第20-21页 |
1.5 功能核酸 | 第21-23页 |
1.5.1 核酸适配体 | 第21-22页 |
1.5.2 DNA 酶 | 第22-23页 |
1.6 论文构想 | 第23-24页 |
第2章 基于 DNA 甲基化敏感性限制性内切酶和末端转移酶的电化学生物传感器用于 DNA 甲基化转移酶活性的灵敏检测 | 第24-34页 |
2.1 前言 | 第24-25页 |
2.2 实验 | 第25-27页 |
2.2.1 试剂与仪器 | 第25-26页 |
2.2.2 传感器界面处理 | 第26页 |
2.2.3 检测 DamMTase活性 | 第26-27页 |
2.2.4 Dam MTase 的抑制剂影响测定 | 第27页 |
2.3 结果与讨论 | 第27-32页 |
2.3.1 实验原理 | 第27-29页 |
2.3.2 传感器的阻抗大小测定 | 第29页 |
2.3.3 Dam MTase 作用时间的优化 | 第29-30页 |
2.3.4 末端转移酶作用时间的优化 | 第30-31页 |
2.3.5 Dam MTase 活性的检测 | 第31-32页 |
2.3.6 抑制剂 5-FU 对DamMTase活性的影响 | 第32页 |
2.4 小结 | 第32-34页 |
第3章 基于 Lambda 外切酶和 DNAzyme 催化显色用于 DNA 糖基化酶的灵敏检测 | 第34-43页 |
3.1 前言 | 第34-35页 |
3.2 实验部分 | 第35-36页 |
3.2.1 实验试剂与仪器 | 第35-36页 |
3.2.2 hOGG1 活性的检测 | 第36页 |
3.2.3 电泳凝胶色谱法测定 hOGG1 酶的活性 | 第36页 |
3.3 结果与讨论 | 第36-42页 |
3.3.1 实验原理 | 第36-39页 |
3.3.2 酶作用时间优化 | 第39页 |
3.3.3 Lambda 外切酶浓度的优化 | 第39-40页 |
3.3.4 hOGG1 活性检测 | 第40-41页 |
3.3.5 传感器的选择性考察 | 第41-42页 |
3.4 小结 | 第42-43页 |
第4章 基于切刻酶等温循环和 Mg~(2+)的核酸 DNA 酶切刻循环放大荧光信号用于DNA 糖基化酶的灵敏检测 | 第43-50页 |
4.1 前言 | 第43-44页 |
4.2 实验部分 | 第44-45页 |
4.2.1 实验试剂与仪器 | 第44-45页 |
4.2.2 DNA 糖基化酶 hOGG1 活性的检测 | 第45页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第45-49页 |
4.3.1 实验原理 | 第45-46页 |
4.3.2 DNA 酶作用时间考察 | 第46-47页 |
4.3.3 分子信标浓度考察 | 第47页 |
4.3.4 Mg_(2+)浓度考察 | 第47-48页 |
4.3.5 hOGG1 酶活性的检测 | 第48-49页 |
4.4 小结 | 第49-50页 |
结论 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-61页 |
附录 A 攻读硕士学位期间发表的学术论文目录 | 第61-62页 |
致谢 | 第62页 |