| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-27页 |
| 1.1 植物与非生物胁迫 | 第11页 |
| 1.2 LEA蛋白与植物非生物胁迫 | 第11-21页 |
| 1.3 脱水蛋白研究进展 | 第21-24页 |
| 1.3.1 脱水蛋白的分类 | 第22页 |
| 1.3.2 脱水蛋白潜在的功能及作用机理 | 第22-24页 |
| 1.4 本研究的意义及目的 | 第24-27页 |
| 第二章 实验方法和材料 | 第27-36页 |
| 2.1 脱水蛋白基因DHN14和WCOR80的克隆及载体构建 | 第27-31页 |
| 2.2 脱水蛋白DHN14和WCOR80序列的生物信息学分析 | 第31页 |
| 2.3 脱水蛋白基因DHN14和WCOR80在不同胁迫下的表达变化情况 | 第31-32页 |
| 2.4 原核表达脱水蛋白DHN14、WCOR80的诱导表达及纯化 | 第32-34页 |
| 2.5 不同胁迫下脱水蛋白DHN14、WCOR80对大肠杆菌生长情况的影响 | 第34页 |
| 2.6 不同胁迫下脱水蛋白DHN14、WCOR80对乳酸脱氢酶活性的保护作用 | 第34-36页 |
| 第三章 实验结果和分析 | 第36-53页 |
| 3.1 脱水蛋白基因DHN14和WCOR80的克隆及载体构建 | 第36-37页 |
| 3.2 脱水蛋白DHN14和WCOR80序列的生物信息学分析 | 第37-40页 |
| 3.2.1 DHN14和WCOR80与其他脱水蛋白序列比对及系统进化树的构建 | 第37-38页 |
| 3.2.2 DHN14和WCOR80双序列比对及二级结构预测 | 第38-39页 |
| 3.2.3 DHN14和WCOR80蛋白的亲疏水性的分析 | 第39-40页 |
| 3.2.4 DHN14和WCOR80脱水蛋白三维结构的预测 | 第40页 |
| 3.3 脱水蛋白基因DHN14和WCOR80在不同胁迫下的表达变化情况 | 第40-42页 |
| 3.3.1 低温胁迫下脱水蛋白基因DHN14和WCOR80表达量变化 | 第41页 |
| 3.3.3 脱落酸(ABA)作用下脱水蛋白基因DHN14和WCOR80表达量变化 | 第41-42页 |
| 3.3.5 聚乙二醇(PEG)作用下脱水蛋白基因DHN14和WCOR80表达量变化 | 第42页 |
| 3.4 原核表达脱水蛋白DHN14、WCOR80的诱导表达及纯化 | 第42-47页 |
| 3.4.1 脱水蛋白DHN14、WCOR80的原核表达及检测 | 第42-43页 |
| 3.4.2 小麦脱水蛋白DHN14、WCOR80的Western-Blot分析 | 第43页 |
| 3.4.3 小麦脱水蛋白DHN14、WCOR80纯化方法的优化 | 第43-45页 |
| 3.4.4 小麦脱水蛋白DHN14、WCOR80的纯化及SDS-PAGE结果分析 | 第45-47页 |
| 3.5 不同胁迫下脱水蛋白DHN14、WCOR80对大肠杆菌生长情况的影响 | 第47-49页 |
| 3.5.1 金属离子胁迫下脱水蛋白DHN14、WCOR80对大肠杆菌生长状况的影响 | 第47-48页 |
| 3.5.2 过氧化氢胁迫下脱水蛋白DHN14、WCOR80对大肠杆菌生长状况的影响 | 第48-49页 |
| 3.6 不同胁迫下脱水蛋白DHN14、WCOR80对乳酸脱氢酶活性的保护作用 | 第49-53页 |
| 3.6.1 高温胁迫下脱水蛋白DHN14、WCOR80对LDH酶活保护的影响 | 第49-50页 |
| 3.6.2 脱水胁迫下脱水蛋白DHN14、WCOR80对LDH酶活保护的影响 | 第50页 |
| 3.6.3 低温胁迫下脱水蛋白DHN14、WCOR80对LDH酶活保护的影响 | 第50-53页 |
| 第四章 讨论 | 第53-57页 |
| 4.1 脱水蛋白基因DHN14和WCOR80不同表达调控机制 | 第53页 |
| 4.2 脱水蛋白DHN14、WCOR80对大肠杆菌在不同胁迫下的保护功能 | 第53-54页 |
| 4.3 脱水蛋白DHN14、WCOR80对乳酸脱氢酶在不同胁迫下抗凝聚作用 | 第54-57页 |
| 第五章 结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 作者简介 | 第65页 |
