| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 前言 | 第14-34页 |
| 1 普鲁兰多糖(Pullulan)简介 | 第14-15页 |
| 2 普鲁兰多糖生产菌株 | 第15-16页 |
| 3 普鲁兰多糖的生产 | 第16-23页 |
| 3.1 普鲁兰多糖的生产条件 | 第16-20页 |
| 3.2 普鲁兰多糖的发酵生产 | 第20-22页 |
| 3.3 普鲁兰多糖的提取 | 第22-23页 |
| 4 普鲁兰多糖的品质分析 | 第23-24页 |
| 5 普鲁兰多糖的生物合成途径和遗传学的研究 | 第24-28页 |
| 5.1 早期研究 | 第24-25页 |
| 5.2 近期研究 | 第25-28页 |
| 6 普鲁兰多糖的应用 | 第28-32页 |
| 6.1 医药应用 | 第29-31页 |
| 6.2 食品应用 | 第31页 |
| 6.3 环境修复 | 第31-32页 |
| 6.4 过滤和色谱 | 第32页 |
| 6.5 菌种保藏 | 第32页 |
| 7 论文研究的目的意义和主要内容 | 第32-34页 |
| 7.1 研究的目的与意义 | 第32-33页 |
| 7.2 论文的主要内容 | 第33-34页 |
| 第二章 高产普鲁兰多糖P16菌株的筛选及鉴定 | 第34-47页 |
| 1 前言 | 第34-35页 |
| 2 材料与方法 | 第35-40页 |
| 2.1 材料 | 第35-36页 |
| 2.2 方法 | 第36-40页 |
| 3 结果与讨论 | 第40-46页 |
| 3.1 高产普鲁兰多糖菌株的筛选 | 第40页 |
| 3.2 P16菌株的形态学观察结果 | 第40-42页 |
| 3.3 P16菌株生理生化鉴定结果 | 第42-43页 |
| 3.4 ITS分子生物学鉴定结果 | 第43-46页 |
| 4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 P16菌株利用蔗糖高产普鲁兰多糖 | 第47-61页 |
| 1 前言 | 第47-48页 |
| 2 材料与方法 | 第48-51页 |
| 2.1 材料 | 第48-49页 |
| 2.2 方法 | 第49-51页 |
| 3 结果与讨论 | 第51-60页 |
| 3.1 P16菌株摇瓶产多糖条件的优化 | 第51-54页 |
| 3.2 摇瓶培养产胞外多糖 | 第54-55页 |
| 3.3 10-1发酵罐分批发酵产胞外多糖 | 第55-57页 |
| 3.4 胞外多糖的普鲁兰酶酶解测定结果 | 第57-58页 |
| 3.5 胞外多糖的红外光谱检测分析结果 | 第58-60页 |
| 4 本章小结 | 第60-61页 |
| 第四章 P16菌株利用菊粉产普鲁兰多糖 | 第61-96页 |
| 1 前言 | 第61-64页 |
| 2 材料与方法 | 第64-75页 |
| 2.1 材料 | 第64-66页 |
| 2.2 方法 | 第66-75页 |
| 3 结果与讨论 | 第75-94页 |
| 3.1 pAPX13-INU1表达载体的构建 | 第75-78页 |
| 3.2 P16菌株的转化及筛选 | 第78-79页 |
| 3.3 高菊粉酶酶活重组菌株的筛选 | 第79-80页 |
| 3.4 INU1基因插入的PCR验证 | 第80-81页 |
| 3.5 INU1基因相对表达量的测定结果 | 第81-82页 |
| 3.6 重组菌株摇瓶培养产酶的结果 | 第82-83页 |
| 3.7 重组菊粉酶粗酶性质的测定 | 第83-87页 |
| 3.8 重组菌株摇瓶培养产胞外多糖 | 第87-91页 |
| 3.9 重组菌株10-1发酵罐发酵产多糖结果 | 第91-92页 |
| 3.10 胞外多糖的普鲁兰酶酶解测定结果 | 第92-93页 |
| 3.11 胞外多糖的红外光谱检测结果 | 第93-94页 |
| 4 本章小结 | 第94-96页 |
| 第五章 产黑色素短梗霉P16菌株PUL1基因的克隆及特征分析 | 第96-113页 |
| 1 前言 | 第96-97页 |
| 2 材料与方法 | 第97-101页 |
| 2.1 材料 | 第97-98页 |
| 2.2 方法 | 第98-101页 |
| 3 结果与讨论 | 第101-111页 |
| 3.1 PUL1基因的PCR扩增 | 第101-102页 |
| 3.2 PCR产物的测序及比对 | 第102-103页 |
| 3.3 PUL1基因的RACE结果 | 第103-104页 |
| 3.4 PUL1基因ORF的预测 | 第104页 |
| 3.5 内含子的预测及验证 | 第104-105页 |
| 3.6 PUL1基因的上游序列的分析结果 | 第105-106页 |
| 3.7 PUL1基因编码的氨基酸序列的分析结果 | 第106-111页 |
| 3.8 PUL1基因比对分析及进化树的构建结果 | 第111页 |
| 4 本章小结 | 第111-113页 |
| 第六章 产黑色素短梗霉P16菌株PUL1基因的敲除 | 第113-131页 |
| 1 前言 | 第113页 |
| 2 材料与方法 | 第113-122页 |
| 2.1 材料 | 第113-115页 |
| 2.2 方法 | 第115-122页 |
| 3 结果与讨论 | 第122-130页 |
| 3.1 PUL1基因敲除载体的构建 | 第122-123页 |
| 3.2 敲除载体的线性化 | 第123-124页 |
| 3.3 P16菌株的转化与筛选 | 第124-125页 |
| 3.4 低产胞外多糖敲除菌株的筛选 | 第125-126页 |
| 3.5 PUL1基因敲除的PCR验证 | 第126-128页 |
| 3.6 PUL1基因相对表达量的测定 | 第128-129页 |
| 3.7 PUL1基因敲除对多糖产量的影响 | 第129-130页 |
| 4 本章小结 | 第130-131页 |
| 第七章 产黑色素短梗霉P16菌株PUL1基因的超表达及细胞定位 | 第131-154页 |
| 1 前言 | 第131页 |
| 2 材料与方法 | 第131-140页 |
| 2.1 材料 | 第131-133页 |
| 2.2 方法 | 第133-140页 |
| 3 结果与讨论 | 第140-152页 |
| 3.1 GFP-PUL1融合基因的构建结果 | 第140-142页 |
| 3.2 pAPX13-NS-GFP-PUL1超表达载体的构建结果 | 第142-143页 |
| 3.3 超表达载体的线性化结果 | 第143-144页 |
| 3.4 酵母转化及筛选结果 | 第144页 |
| 3.5 高产普鲁兰多糖重组菌株的筛选结果 | 第144-145页 |
| 3.6 PUL1基因超表达的PCR验证结果 | 第145-146页 |
| 3.7 PUL1基因表达量的变化测定结果 | 第146-147页 |
| 3.8 PUL1基因细胞定位的观察结果 | 第147-148页 |
| 3.9 普鲁兰多糖高产菌株G14摇瓶培养的结果 | 第148-149页 |
| 3.10 G14菌株10-1发酵罐发酵产胞外多糖的结果 | 第149-150页 |
| 3.11 普鲁兰酶酶解测定的结果 | 第150-151页 |
| 3.12 分子量的测定结果 | 第151-152页 |
| 4 本章小结 | 第152-154页 |
| 论文总结与创新点 | 第154-156页 |
| 参考文献 | 第156-167页 |
| 致谢 | 第167-168页 |
| 发表的学术论文 | 第168-169页 |
| 个人简历 | 第169页 |
