| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-25页 |
| 1.1 研究背景 | 第14-23页 |
| 1.1.1 动脉粥样硬化和急性冠脉综合征 | 第14页 |
| 1.1.2 CD137信号与动脉粥样硬化 | 第14-17页 |
| 1.1.3 自噬与动脉粥样硬化 | 第17-19页 |
| 1.1.4 血管钙化及与动脉粥样硬化 | 第19-22页 |
| 1.1.5 CD137可能调控自噬启动微钙化 | 第22-23页 |
| 1.2 研究的目的意义、内容与技术路线 | 第23-25页 |
| 1.2.1 研究目的意义 | 第23页 |
| 1.2.2 研究内容 | 第23-24页 |
| 1.2.3 技术路线 | 第24-25页 |
| 第二章 CD137信号通过调控自噬促进ApoE~(-/-)小鼠斑块钙化形成 | 第25-47页 |
| 2.1 材料 | 第25-28页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.2 主要试剂及耗材 | 第26页 |
| 2.1.3 主要溶液及成份 | 第26-28页 |
| 2.1.4 手术器械 | 第28页 |
| 2.1.5 实验动物 | 第28页 |
| 2.2 方法 | 第28-37页 |
| 2.2.1 改良的组织贴块法获取原代小鼠VSMCs | 第28-29页 |
| 2.2.2 免疫荧光染色法鉴定原代VSMC性质 | 第29-30页 |
| 2.2.3 VSMCs中CD137的诱导 | 第30页 |
| 2.2.4 构建ApoE~(-/-)小鼠AS模型及动物分组处理 | 第30页 |
| 2.2.5 细胞分组及细胞处理 | 第30-31页 |
| 2.2.6 免疫组织化学染色 | 第31-32页 |
| 2.2.7 mRFP-GRP-LC3双标腺病毒感染细胞 | 第32页 |
| 2.2.8 流式细胞术检测自噬 | 第32页 |
| 2.2.9 细胞蛋白的提取及Western蛋白印迹 | 第32-35页 |
| 2.2.10 透射电镜观察斑块及体外培养的VSMC中的自噬小体 | 第35-36页 |
| 2.2.11 细胞及组织vonKossa钙化染色 | 第36页 |
| 2.2.12 统计学方法 | 第36-37页 |
| 2.3 结果 | 第37-44页 |
| 2.3.1 原代细胞培养及鉴定 | 第37-38页 |
| 2.3.2 CM诱导VSMCs表达CD137分子上调 | 第38页 |
| 2.3.3 CD137信号对ApoE~(-/-)小鼠粥样斑块自噬的影响 | 第38-40页 |
| 2.3.4 CD137信号对VSMCs自噬的影响 | 第40-43页 |
| 2.3.5 CD137信号对ApoE~(-/-)小鼠粥样斑块钙化的影响 | 第43页 |
| 2.3.6 CD137信号对VSMCs钙化的影响 | 第43-44页 |
| 2.4 讨论 | 第44-47页 |
| 第三章 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 综述 | 第53-60页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第61页 |
