摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第一章 前言 | 第10-23页 |
1.1 中药仙茅的研究进展 | 第10-14页 |
1.1.1 中药仙茅的本草考证 | 第10-11页 |
1.1.2 仙茅的化学成分研究 | 第11-12页 |
1.1.3 仙茅的药理活性研究 | 第12-14页 |
1.2 多糖和仙茅多糖的研究进展 | 第14-21页 |
1.2.1 多糖的运用领域 | 第14-15页 |
1.2.2 多糖的常用研究方法 | 第15-20页 |
1.2.3 仙茅多糖的研究进展 | 第20-21页 |
1.3 研究目的及意义 | 第21-22页 |
1.4 本文主要研究内容 | 第22-23页 |
第二章 仙茅多糖的提取和分离纯化 | 第23-37页 |
2.1 实验材料 | 第23-24页 |
2.1.1 药品与试剂 | 第23页 |
2.1.2 仪器与设备 | 第23-24页 |
2.2 实验方法 | 第24-26页 |
2.2.1 仙茅多糖样品的制备 | 第24页 |
2.2.2 试验方法与设计 | 第24-25页 |
2.2.3 仙茅粗多糖的分离纯化 | 第25-26页 |
2.3 结果与分析 | 第26-35页 |
2.3.1 单因素试验对多糖提取率的影响 | 第26-28页 |
2.3.2 响应面试验结果和分析 | 第28-31页 |
2.3.3 验证试验 | 第31页 |
2.3.4 酶解法与热水浸提法和超声提取法多糖得率的比较 | 第31-32页 |
2.3.5 分离纯化结果与分析 | 第32-35页 |
2.4 结论与讨论 | 第35-37页 |
第三章 XMPS-1 的葡聚糖酶酶解工艺优化及酶解产物研究 | 第37-54页 |
3.1 实验材料 | 第37-38页 |
3.1.1 药品与试剂 | 第37页 |
3.1.2 仪器与设备 | 第37-38页 |
3.2 试验方法 | 第38-40页 |
3.2.1 XMPS-1 酶解产物还原糖含量的测定 | 第38-39页 |
3.2.2 XMPS-1 酶解工艺的优化 | 第39-40页 |
3.2.3 XMPS-1 的葡聚糖酶酶解产物的制备与分离分析 | 第40页 |
3.3 结果与分析 | 第40-52页 |
3.3.1 DNS法的优化结果 | 第40-42页 |
3.3.2 单因素试验对还原糖生成量的影响 | 第42-44页 |
3.3.3 响应面试验结果和分析 | 第44-47页 |
3.3.4 验证试验 | 第47页 |
3.3.5 XMPS-1 的葡聚糖酶酶解产物分离分析 | 第47-52页 |
3.4 结论与讨论 | 第52-54页 |
第四章 XMPS-1 的β-半乳糖苷酶酶解工艺优化及酶解产物研究 | 第54-68页 |
4.1 实验材料 | 第54-55页 |
4.1.1 药品与试剂 | 第54页 |
4.1.2 仪器与设备 | 第54-55页 |
4.2 试验方法 | 第55-56页 |
4.2.1 XMPS-1 酶解产物还原糖含量的测定 | 第55页 |
4.2.2 XMPS-1 酶解工艺的优化 | 第55-56页 |
4.2.3 XMPS-1 的β-半乳糖苷酶酶解产物分离分析 | 第56页 |
4.3 结果与分析 | 第56-66页 |
4.3.1 DNS法的优化结果 | 第56-58页 |
4.3.2 单因素试验对还原糖生成量的影响 | 第58-60页 |
4.3.3 响应面试验结果和分析 | 第60-63页 |
4.3.4 验证试验 | 第63页 |
4.3.5 XMPS-1 的β-半乳糖苷酶酶解产物分离分析 | 第63-66页 |
4.4 结论与讨论 | 第66-68页 |
第五章 XMPS-1 的葡聚糖酶酶解产物活性研究 | 第68-83页 |
5.1 实验材料 | 第68-69页 |
5.1.1 药品与试剂 | 第68-69页 |
5.1.2 仪器与设备 | 第69页 |
5.2 试验方法 | 第69-71页 |
5.2.1 MTT法检测各酶解组分对细胞的毒性作用 | 第69-71页 |
5.2.2 酶解产物对RAW264.7 细胞分泌几种活性因子的作用 | 第71页 |
5.3 结果与分析 | 第71-81页 |
5.3.1 样品的细胞毒性作用 | 第71-73页 |
5.3.2 酶解产物对RAW264.7 细胞分泌几种活性因子的影响 | 第73-81页 |
5.4 结论与讨论 | 第81-83页 |
第六章 全文总结 | 第83-87页 |
6.1 主要研究成果 | 第83-84页 |
6.2 存在的问题 | 第84-85页 |
6.3 展望 | 第85-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-94页 |
附录 | 第94-95页 |