摘要 | 第6-7页 |
abstract | 第7页 |
英文缩略表 | 第10-11页 |
第一章 引言 | 第11-24页 |
1.1 植物细胞膜系统 | 第11页 |
1.2 植物逆境生理 | 第11-17页 |
1.2.1 植物响应非生物逆境胁迫的研究进展 | 第12-13页 |
1.2.2 与Ca~(2+)偶联的CDPK和SOS信号传导途径 | 第13页 |
1.2.3 与Ca~(2+)信号无关的的MAPK信号传递途径 | 第13-14页 |
1.2.4 依赖ABA的信号传导途径 | 第14-15页 |
1.2.5 植物不依赖ABA的信号传导途径 | 第15-16页 |
1.2.6 与非生物逆境胁迫应答相关的基因产物 | 第16-17页 |
1.3 表观遗传学 | 第17-18页 |
1.3.1 表观遗传学定义 | 第17页 |
1.3.2 甲基化 | 第17-18页 |
1.3.3 组蛋白修饰 | 第18页 |
1.4 分子标记 | 第18-22页 |
1.4.1 简单重复序列(SSR) | 第18-19页 |
1.4.2 单核苷酸多态(SNP) | 第19页 |
1.4.3 限制性片断长度多态性(RFLP) | 第19-20页 |
1.4.4 随机扩增多态性DNA(RAPD) | 第20页 |
1.4.5 扩增片段长度多态性(AFLP) | 第20-21页 |
1.4.6 表达序列标签(EST)及EST-SSR | 第21页 |
1.4.7 序列标签位点(STS) | 第21-22页 |
1.4.8 插入/缺失分子标记(InDel) | 第22页 |
1.5 本研究的目的及意义 | 第22-24页 |
第二章 材料与方法 | 第24-33页 |
2.1 实验材料与试剂 | 第24-26页 |
2.1.1 植物材料 | 第24页 |
2.1.2 常用化学试剂 | 第24-26页 |
2.2 试验方法 | 第26-33页 |
2.2.1 突变体库构建 | 第26页 |
2.2.2 农艺性状考察 | 第26页 |
2.2.3 叶片下表皮细胞观察 | 第26页 |
2.2.4 叶片细胞膜透性观察 | 第26-27页 |
2.2.5 水稻白叶枯病原菌接种 | 第27页 |
2.2.6 InDel分子标记的开发 | 第27页 |
2.2.7 F_2群体构建与遗传分析 | 第27页 |
2.2.8 基因定位 | 第27-30页 |
2.2.8.1 提取水稻叶片基因组DNA | 第27-28页 |
2.2.8.2 琼脂糖凝胶电泳 | 第28页 |
2.2.8.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第28-29页 |
2.2.8.4 基因初步定位 | 第29-30页 |
2.2.9 水稻叶片总RNA的提取、纯化及反转 | 第30-32页 |
2.2.9.1 提取水稻叶片总RNA | 第30-31页 |
2.2.9.2 纯化水稻叶片RNA | 第31-32页 |
2.2.9.3 水稻叶片RNA的反转 | 第32页 |
2.2.10 荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第32-33页 |
第三章 结果与分析 | 第33-44页 |
3.1 突变体库筛选及表型分析 | 第33-34页 |
3.2 叶片细胞学观察 | 第34-35页 |
3.3 叶片细胞膜透性观察 | 第35-36页 |
3.4 野生型突变体田间接种鉴定 | 第36页 |
3.5 突变体的遗传分析 | 第36页 |
3.6 水浸状突变体wss1的分子标记定位 | 第36-40页 |
3.7 候选基因测序及分析 | 第40-41页 |
3.8 预测功能基因的表达分析 | 第41-44页 |
第四章 讨论 | 第44-47页 |
4.1 水浸状突变性状的初探 | 第44页 |
4.2 定位群体偏分离及分子标记定位较远的可能原因 | 第44-45页 |
4.3 候选基因分析 | 第45-47页 |
第五章 全文结论 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
作者简历 | 第57页 |