| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 符号说明 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-23页 |
| 1.0 引言 | 第9-10页 |
| 1.1 植物通过质外体响应铝毒害 | 第10-11页 |
| 1.2 植物通过共质体响应铝毒害 | 第11-12页 |
| 1.3 植物通过激素响应铝毒害 | 第12-14页 |
| 1.4 植物通过液泡隔离铝毒害 | 第14页 |
| 1.5 植物通过分泌有机酸抵抗铝毒害 | 第14-16页 |
| 1.5.1 苹果酸与铝毒害 | 第15-16页 |
| 1.5.2 柠檬酸与铝毒害 | 第16页 |
| 1.6 特异的转运载体与铝毒害 | 第16-18页 |
| 1.6.1 Nrat1定位在质膜上,转运三价铝进入根细胞 | 第16-17页 |
| 1.6.2 STAR1-STAR2复合物转运铝运出细胞 | 第17-18页 |
| 1.7 转录因子与铝耐受 | 第18-23页 |
| 1.7.1 STOP1调控拟南芥多重基因表达 | 第19-20页 |
| 1.7.2 ART1调控水稻多重基因表达 | 第20-23页 |
| 第二章 材料和方法 | 第23-44页 |
| 2.1 实验材料及试剂 | 第23-28页 |
| 2.1.1 植物材料及生长环境 | 第23页 |
| 2.1.2 菌株和载体 | 第23页 |
| 2.1.3 药品及其相关配制 | 第23-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-44页 |
| 2.2.1 PCR法检测T-DNA插入突变株 | 第28-30页 |
| 2.2.2 拟南芥种子的灭菌 | 第30页 |
| 2.2.3 全营养液法培养拟南芥 | 第30-31页 |
| 2.2.4 浸泡法准备实验所需平板 | 第31页 |
| 2.2.5 构建载体 | 第31-37页 |
| 2.2.6 拟南芥转化以及阳性植株的筛选 | 第37-38页 |
| 2.2.7 植物基因组DNA的提取 | 第38-39页 |
| 2.2.8 植物RNA的提取以及反转录合成cDNA | 第39-41页 |
| 2.2.9 主根长度的统计 | 第41页 |
| 2.2.10 拟南芥根尖铝含量的测定 | 第41-42页 |
| 2.2.11 拟南芥根的铝分离 | 第42页 |
| 2.2.12 拟南芥根尖Morin染色 | 第42-43页 |
| 2.2.13 拟南芥苏木精染色 | 第43-44页 |
| 第三章 实验结果和分析 | 第44-61页 |
| 3.1 突变体纯系的鉴定 | 第44-45页 |
| 3.1.1 rhd突变体纯系的鉴定 | 第44页 |
| 3.1.2 rhd突变体插入位点 | 第44-45页 |
| 3.1.3 RHD在不同突变体的表达分析 | 第45页 |
| 3.2 超表达载体的构建 | 第45-46页 |
| 3.3 rhd突变体的表型分析 | 第46-56页 |
| 3.3.1 rhd突变体对铝胁迫抑制的根伸长更加敏感 | 第46-49页 |
| 3.3.2 rhd-1突变体根的伸长在其它离子胁迫以及不同pH条件下的表型分析 | 第49-50页 |
| 3.3.3 Al处理RHD的表达分析 | 第50-52页 |
| 3.3.4 rhd-1突变体根尖在铝胁迫条件下积累较野生型更多的铝 | 第52-54页 |
| 3.3.5 rhd-1突变体中Al耐受相关基因的检测 | 第54-56页 |
| 3.4 rhd-1突变体在铝胁迫条件下的表达谱分析 | 第56-60页 |
| 3.5 RHD响应铝胁迫可能的作用模式 | 第60-61页 |
| 第四章 讨论 | 第61-63页 |
| 4.1 RHD基因的功能 | 第61页 |
| 4.2 拟南芥耐受铝的机制 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第76页 |
