| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第10-20页 |
| 1.1 神经干细胞 | 第10页 |
| 1.2 神经发生的主要区域以及迁移流 | 第10-13页 |
| 1.2.1 SVZ区域的神经发生 | 第11页 |
| 1.2.2 SGZ区域的神经发生 | 第11-12页 |
| 1.2.3 下丘脑区域的神经发生 | 第12页 |
| 1.2.4 第四脑室的神经发生 | 第12-13页 |
| 1.3 神经发生的信号通路调控 | 第13-17页 |
| 1.3.1 Wnt/β -catenin信号通路 | 第13-14页 |
| 1.3.2 miR-30c/sema3A信号通路 | 第14-15页 |
| 1.3.3 Notch信号通路 | 第15页 |
| 1.3.4 转录因子 | 第15-16页 |
| 1.3.5 其他调控因素 | 第16-17页 |
| 1.4 神经干细胞与神经退行性疾病 | 第17-19页 |
| 1.4.1 帕金森氏病 | 第17页 |
| 1.4.2 阿尔茨海默病 | 第17-18页 |
| 1.4.3 肌萎缩侧索硬化症 | 第18页 |
| 1.4.4 亨廷顿病 | 第18-19页 |
| 1.5 本论文研究意义 | 第19-20页 |
| 第2章 实验设备与试剂耗材 | 第20-22页 |
| 2.1 实验设备 | 第20-21页 |
| 2.2 试剂耗材 | 第21页 |
| 2.3 实验抗体信息 | 第21-22页 |
| 第3章 实验方法 | 第22-33页 |
| 3.1 CUBIC法概述 | 第22-24页 |
| 3.2 主要耗材以及试剂 | 第24-25页 |
| 3.3 实验样品准备 | 第25-28页 |
| 3.3.1 实验动物 | 第25页 |
| 3.3.2 pcr鉴定小鼠基因型 | 第25-26页 |
| 3.3.3 小鼠注射他莫昔芬用量实验 | 第26-27页 |
| 3.3.4 样品处理 | 第27-28页 |
| 3.4 免疫荧光染色 | 第28-29页 |
| 3.4.1 试剂配置 | 第28页 |
| 3.4.2 免疫荧光染色 | 第28-29页 |
| 3.5 蔡司Lightsheet z.1 成像 | 第29页 |
| 3.5.1 Lightsheet z.1 成像系统介绍 | 第29页 |
| 3.5.2 样品成像处理 | 第29页 |
| 3.6 CUBIC问题以及解决方法 | 第29-33页 |
| 第4章 实验结果 | 第33-46页 |
| 4.1 小鼠基因型鉴定结果 | 第33页 |
| 4.2 他莫西芬注射实验动物用量以及时间 | 第33-38页 |
| 4.2.1 Tm注射量的确定 | 第33页 |
| 4.2.2 Tm注射量时长的确定 | 第33-38页 |
| 4.3 不同时期胎鼠大脑共聚焦成像结论 | 第38页 |
| 4.4 CUBIC法处理不同时期小鼠大脑 | 第38-40页 |
| 4.4.1 CUBIC法样品准备灌注效果 | 第38页 |
| 4.4.2 胎鼠大脑透明化结果 | 第38-40页 |
| 4.5 Lightsheet Z.1 激光片层扫描显微系统 3D成像结果 | 第40页 |
| 4.6 C57BL6胎鼠荧光免疫染色对CD133~+细胞进行定位 | 第40-45页 |
| 4.7 实验结论总结 | 第45-46页 |
| 第5章 讨论 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
