| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 引言 | 第11-23页 |
| 1.1 细菌生物被膜 | 第11-16页 |
| 1.1.1 生物被膜简介 | 第11页 |
| 1.1.2 生物被膜的形成 | 第11-12页 |
| 1.1.3 生物被膜的结构 | 第12-13页 |
| 1.1.4 生物被膜的抗性 | 第13-14页 |
| 1.1.5 生物被膜对食品工业的危害 | 第14页 |
| 1.1.6 食品工业对生物被膜的控制 | 第14-16页 |
| 1.2 壳聚糖在食品中的应用 | 第16-18页 |
| 1.2.1 壳聚糖的结构和来源 | 第16-17页 |
| 1.2.2 壳聚糖的溶解性和生物活性 | 第17页 |
| 1.2.3 壳聚糖在水产品保鲜方面应用 | 第17-18页 |
| 1.2.4 壳聚糖在生物被膜研究方面的应用 | 第18页 |
| 1.3 希瓦氏菌 | 第18-20页 |
| 1.3.1 希瓦氏菌的特性及其分布 | 第18-19页 |
| 1.3.2 希瓦氏菌与腐败 | 第19页 |
| 1.3.3 希瓦氏菌生物被膜研究 | 第19-20页 |
| 1.4 本课题的研究思路目的和意义 | 第20-23页 |
| 第二章 希瓦氏菌生物被膜形成的特性研究 | 第23-37页 |
| 2.1 材料和仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.1 菌株 | 第23页 |
| 2.1.2 试剂和仪器 | 第23-24页 |
| 2.2 方法 | 第24-27页 |
| 2.2.1 结晶紫定量测定生物被膜 | 第24页 |
| 2.2.2 引导片法定量测定生物被膜活菌数 | 第24-25页 |
| 2.2.3 电子扫描显微镜(SEM)检验 | 第25页 |
| 2.2.4 不同菌株形成生物被膜 | 第25页 |
| 2.2.5 不同培养基中形成生物被膜 | 第25页 |
| 2.2.6 pH对形成生物膜的影响 | 第25-26页 |
| 2.2.7 NaCl浓度对形成生物膜的影响 | 第26页 |
| 2.2.8 糖分对生物被膜形成的影响 | 第26页 |
| 2.2.9 不同黏附材料上形成生物被膜 | 第26页 |
| 2.2.10 希瓦氏菌生物被膜形成过程 | 第26-27页 |
| 2.3 结果与分析 | 第27-35页 |
| 2.3.1 波罗的海希瓦氏菌不同分离菌株形成生物被膜 | 第27页 |
| 2.3.2 培养基对生物被膜形成的影响 | 第27-29页 |
| 2.3.3 pH对形成生物膜的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.4 NaCl含量对形成生物膜的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.5 生物被膜形成过程 | 第31-33页 |
| 2.3.6 不同黏附材料上形成生物被膜 | 第33-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-37页 |
| 第三章 壳聚糖对希瓦氏菌生物被膜形成的抑制 | 第37-49页 |
| 3.1 材料和仪器 | 第37-38页 |
| 3.1.1 菌株 | 第37页 |
| 3.1.2 试剂和仪器 | 第37-38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-41页 |
| 3.2.1 菌株和溶液的配制 | 第38页 |
| 3.2.2 壳聚糖对希瓦氏菌的MIC及MIBC | 第38-39页 |
| 3.2.3 壳聚糖对希瓦氏菌黏附的影响 | 第39页 |
| 3.2.4 壳聚糖对生物被膜形成的抑制 | 第39页 |
| 3.2.5 被膜菌新陈代谢测定 | 第39-40页 |
| 3.2.6 胞外多糖含量测定 | 第40页 |
| 3.2.7 数据处理 | 第40-41页 |
| 3.3 结果与分析 | 第41-48页 |
| 3.3.1 壳聚糖对S.baltica的MIC及MIBC | 第41页 |
| 3.3.2 Sub-MIC壳聚糖对S.baltica黏附的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.3 Sub-MIC壳聚糖抑制S.baltica生物被膜形成 | 第42-44页 |
| 3.3.4 SEM观察1/2MIC壳聚糖对生物被膜的抑制 | 第44页 |
| 3.3.5 Sub-MIC壳聚糖在鱼汁中对S.baltica生物被膜抑制作用 | 第44-46页 |
| 3.3.6 壳聚糖结合茶多酚对S.baltica黏附的作用 | 第46页 |
| 3.3.7 壳聚糖结合茶多酚对S.baltica生物被膜形成的抑制作用 | 第46-48页 |
| 3.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 第四章 壳聚糖对希瓦氏菌成熟生物被膜清除的作用 | 第49-57页 |
| 4.1 材料和仪器 | 第49-50页 |
| 4.1.1 菌株 | 第49页 |
| 4.1.2 试剂和仪器 | 第49-50页 |
| 4.2 实验方法 | 第50页 |
| 4.2.1 溶液制备 | 第50页 |
| 4.2.2 壳聚糖清除成熟生物被膜 | 第50页 |
| 4.2.3 数据处理 | 第50页 |
| 4.3 结果与分析 | 第50-56页 |
| 4.3.1 壳聚糖对S.baltica成熟生物被膜菌代谢活性的影响 | 第50-51页 |
| 4.3.2 壳聚糖对S.baltica成熟生物被膜EPS的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.3 壳聚糖对S.baltica成熟生物被膜菌的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.4 SEM观察壳聚糖对S.baltica成熟生物被膜的清除 | 第53-54页 |
| 4.3.5 壳聚糖结合茶多酚对S.baltic成熟生物被膜菌的影响 | 第54-55页 |
| 4.3.6 壳聚糖结合茶多酚对S.baltic成熟生物被膜EPS的影响 | 第55-56页 |
| 4.4 本章小结 | 第56-57页 |
| 第5章 总结、创新点与展望 | 第57-59页 |
| 5.1 研究结论 | 第57页 |
| 5.2 创新点 | 第57页 |
| 5.3 展望 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
