摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
第一章 前言 | 第14-37页 |
1.1 蒙古扁桃研究现状综述 | 第14-21页 |
1.1.1 蒙古扁桃系统分类的争议 | 第14-15页 |
1.1.2 蒙古扁桃的形态特征 | 第15-16页 |
1.1.3 蒙古扁桃的生态和经济价值 | 第16-17页 |
1.1.4 蒙古扁桃研究现状 | 第17-21页 |
1.2 菌根对干旱胁迫的响应 | 第21-32页 |
1.2.1 菌根植物抗旱机制 | 第22-30页 |
1.2.2 干旱对菌根真菌及其群落的影响 | 第30-32页 |
1.2.3 菌根技术在干旱地区的应用 | 第32页 |
1.3 高通量测序技术 | 第32-34页 |
1.3.1 高通量测序技术简介 | 第32-33页 |
1.3.2 高通量测序在李属植物上的运用 | 第33-34页 |
1.3.3 高通量测序在菌根研究中运用 | 第34页 |
1.4 研究目的与意义 | 第34-36页 |
1.5 研究技术路线 | 第36-37页 |
第二章 纯培养条件下非菌根化蒙古扁桃抗旱机制 | 第37-67页 |
2.1 材料与方法 | 第37-46页 |
2.1.1 苗木培育及水分胁迫 | 第37页 |
2.1.2 生长状况以及生理生化指标的测定 | 第37-38页 |
2.1.3 总RNA提取、mRNA文库构建及测序 | 第38-42页 |
2.1.4 测序Reads的处理及组装 | 第42页 |
2.1.5 功能注释与分类 | 第42页 |
2.1.6 检测不同表达的转录本 | 第42-43页 |
2.1.7 实时荧光定量PCR | 第43-46页 |
2.2 结果与分析 | 第46-61页 |
2.2.1 RNA提取及质检 | 第46页 |
2.2.2 蒙古扁桃转录组测序 | 第46-49页 |
2.2.3 蒙古扁桃转录组一般特征 | 第49-51页 |
2.2.4 差异表达转录本一般分析 | 第51-52页 |
2.2.5 qRT-PCR验证 | 第52-55页 |
2.2.6 干旱胁迫下蒙古扁桃的光合作用 | 第55-56页 |
2.2.7 蒙古扁桃体内激素平衡及激素信号传导路径中DETs | 第56-57页 |
2.2.8 蒙古扁桃体叶片水势及水孔通道蛋白家族中DETs | 第57-60页 |
2.2.9 蒙古扁桃体总SDO活性及SOD家族中DETs | 第60-61页 |
2.3 讨论 | 第61-65页 |
2.3.1 蒙古扁桃NGS测序 | 第61-62页 |
2.3.2 蒙古扁桃生理生化水平和分子水平的抗旱机制 | 第62-65页 |
2.4 本章结论 | 第65-67页 |
第三章 菌根化蒙古扁桃分子水平抗旱机理 | 第67-119页 |
3.1 本章研究背景 | 第67-69页 |
3.1.1 前期研究结果 | 第67-68页 |
3.1.2 本章研究内容 | 第68-69页 |
3.2 材料与方法 | 第69-72页 |
3.2.1 菌根化苗木的培育及水分胁迫 | 第69页 |
3.2.2 总RNA提取、RNA文库构建及测序 | 第69页 |
3.2.3 测序数据分析 | 第69-72页 |
3.2.4 实时荧光定量PCR | 第72页 |
3.3 结果与分析 | 第72-109页 |
3.3.1 菌根侵染状况 | 第72页 |
3.3.2 RNA提取及质检 | 第72-73页 |
3.3.3 测序数据统计 | 第73-75页 |
3.3.4 拼接结果统计 | 第75-77页 |
3.3.5 转录本表达定量及RNA分类分析 | 第77-79页 |
3.3.6 差异表达转录本分析 | 第79-83页 |
3.3.7 菌根化蒙古扁桃分子水平抗旱机理 | 第83-107页 |
3.3.8 差异转录本聚类分析 | 第107-108页 |
3.3.9 qRT-PCR验证 | 第108-109页 |
3.4 讨论 | 第109-117页 |
3.4.1 菌根化蒙古扁桃测序及拼接质量的评估 | 第109-110页 |
3.4.2 差异基因的GO分类 | 第110-111页 |
3.4.3 分子水平上分析菌根化蒙古扁桃抗旱机理 | 第111-117页 |
3.5 本章结论 | 第117-119页 |
第四章 结论与展望 | 第119-120页 |
4.1 菌根对蒙古扁桃抗旱机制影响的分子路径 | 第119页 |
4.2 展望 | 第119-120页 |
致谢 | 第120-121页 |
参考文献 | 第121-149页 |
作者简介 | 第149页 |