| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 文献回顾 | 第16-35页 |
| 第一部分 脱细胞组织生物水凝胶的构建及其对脐带间充质干细胞生长、增殖和肌向分化的影响 | 第35-55页 |
| 1 材料 | 第35-38页 |
| 1.1 主要试剂与仪器 | 第35-37页 |
| 1.2 材料 | 第37页 |
| 1.3 实验动物 | 第37-38页 |
| 2 方法 | 第38-46页 |
| 2.1 猪来源脱细胞骨骼肌水凝胶（p DMH）的制备 | 第38-40页 |
| 2.2 大鼠脐带间充质干细胞（r UCMSCs）分离培养及鉴定 | 第40-41页 |
| 2.3 不同浓度脱细胞骨骼肌水凝胶对于r UCMSCs生长、增殖的影响 | 第41-42页 |
| 2.4 脱细胞骨骼肌水凝胶对于r UCMSCs肌向分化的促进作用 | 第42-46页 |
| 2.5 统计学分析 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-53页 |
| 3.1 脱细胞骨骼肌的制备 | 第46-48页 |
| 3.2 脱细胞骨骼肌水凝胶的制备与检测 | 第48页 |
| 3.3 大鼠脐带间充质干细胞的培养与鉴定 | 第48-50页 |
| 3.4 脱细胞骨骼肌水凝胶对于脐带间充质干细胞生长与增殖的影响 | 第50-51页 |
| 3.5 脱细胞骨骼肌水凝胶对于脐带间充质干细胞成肌能力的影响 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-54页 |
| 5 小结 | 第54-55页 |
| 第二部分 脐带间充质干细胞来源的外泌体在体内、体外对血管生成的促进作用 | 第55-76页 |
| 1 材料 | 第55-57页 |
| 1.1 主要试剂和仪器 | 第55-57页 |
| 1.2 材料 | 第57页 |
| 1.3 实验动物 | 第57页 |
| 2 方法 | 第57-65页 |
| 2.1 大鼠脐静脉内皮细胞（r UVECs）的分离培养与鉴定 | 第57-58页 |
| 2.2 大鼠脐带间充质干细胞对大鼠脐静脉内皮细胞的影响 | 第58-61页 |
| 2.3 大鼠脐带间充质干细胞来源外泌体（r UCMSCs-Exosome）对大鼠脐静脉内皮细胞的影响 | 第61-63页 |
| 2.4 rUCMSCs-Exosome对于体内成血管的影响 | 第63-65页 |
| 2.5 统计学分析 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-73页 |
| 3.1 大鼠脐静脉内皮细胞的培养与鉴定 | 第65-66页 |
| 3.2 大鼠脐带间充质干细胞条件培养液对于大鼠脐静脉内皮细胞生物学特性的影响 | 第66-69页 |
| 3.3 来源于低氧条件下大鼠脐带间充质干细胞的外泌体对于脐静脉内皮细胞生物学特性的影响 | 第69-72页 |
| 3.4 来源于细胞低氧条件培养液的外泌体体内促进血管生成的作用 | 第72-73页 |
| 4 讨论 | 第73-74页 |
| 5 小结 | 第74-76页 |
| 第三部分 含有促血管生成外泌体的脱细胞外基质-间充质干细胞生物水凝胶修复大鼠胫骨前肌大体积缺损 | 第76-89页 |
| 1 材料 | 第76-77页 |
| 1.1 主要试剂与仪器 | 第76-77页 |
| 1.2 材料 | 第77页 |
| 1.3 动物 | 第77页 |
| 2 方法 | 第77-80页 |
| 2.1 组织工程生物水凝胶修复体的制备 | 第77-78页 |
| 2.2 大鼠胫骨前肌（TA）大体积缺损修复 | 第78-79页 |
| 2.3 组织学检测 | 第79页 |
| 2.4 功能学检测 | 第79-80页 |
| 2.5 统计学分析 | 第80页 |
| 3 结果 | 第80-86页 |
| 3.1 组织工程生物水凝胶修复的制备 | 第80-81页 |
| 3.2 胫骨前肌大体积缺损修复效果 | 第81-86页 |
| 4 讨论 | 第86-88页 |
| 5 小结 | 第88-89页 |
| 结论 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-116页 |
| 附录 | 第116-118页 |
| 个人简历和研究成果 | 第118-120页 |
| 致谢 | 第120页 |
