| 中文摘要 | 第3-7页 |
| 英文摘要 | 第7-9页 |
| 符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-21页 |
| 参考文献 | 第18-21页 |
| 第一部分 缺氧微环境对人肝癌HepG2细胞上皮间质转化的影响 | 第21-32页 |
| 1 材料 | 第21-25页 |
| 1.1 药品 | 第21页 |
| 1.2 细胞株 | 第21页 |
| 1.3 实验试剂 | 第21-22页 |
| 1.4 主要仪器及耗材 | 第22-23页 |
| 1.5 主要试剂配制 | 第23-25页 |
| 2 方法 | 第25-28页 |
| 2.1 细胞培养 | 第25页 |
| 2.2 MTT实验 | 第25页 |
| 2.3 细胞形态观察 | 第25页 |
| 2.4 Western blot实验 | 第25-27页 |
| 2.5 细胞免疫荧光实验 | 第27页 |
| 2.6 统计学处理 | 第27-28页 |
| 3 结果 | 第28-31页 |
| 3.1 CoCl_2体外建立缺氧微环境模型 | 第28-29页 |
| 3.2 缺氧微环境对人肝癌HepG2细胞EMT的影响 | 第29-31页 |
| 4 讨论 | 第31-32页 |
| 第二部分 南蛇藤提取物对缺氧微环境下人肝癌HepG2细胞的影响 | 第32-46页 |
| 1 材料 | 第32-34页 |
| 1.1 药品 | 第32页 |
| 1.2 细胞株 | 第32页 |
| 1.3 实验试剂 | 第32-33页 |
| 1.4 主要仪器及耗材 | 第33页 |
| 1.5 主要试剂配制 | 第33-34页 |
| 2 方法 | 第34-37页 |
| 2.1 细胞培养 | 第34页 |
| 2.2 MTT实验 | 第34页 |
| 2.3 流式细胞术检测凋亡 | 第34-35页 |
| 2.4 JC-1染色检测线粒体膜电位 | 第35页 |
| 2.5 细胞划痕实验 | 第35页 |
| 2.6 细胞侵袭和迁移实验 | 第35-36页 |
| 2.7 Western blot实验 | 第36页 |
| 2.8 细胞免疫荧光实验 | 第36页 |
| 2.9 统计学处理 | 第36-37页 |
| 3 结果 | 第37-45页 |
| 3.1 COE对缺氧微环境下HepG2细胞增殖的影响 | 第37-40页 |
| 3.2 COE对缺氧微环境下HepG2细胞侵袭和迁移能力的影响 | 第40-43页 |
| 3.3 COE对缺氧微环境下HepG2细胞上皮间质转化的影响 | 第43-45页 |
| 4 讨论 | 第45-46页 |
| 第三部分 南蛇藤提取物抑制缺氧微环境下人肝癌HepG2细胞上皮间质转化的分子机制 | 第46-55页 |
| 1 材料 | 第46-48页 |
| 1.1 药品 | 第46页 |
| 1.2 细胞株 | 第46页 |
| 1.3 实验试剂 | 第46-47页 |
| 1.4 主要仪器及耗材 | 第47-48页 |
| 2 方法 | 第48-49页 |
| 2.1 药物准备 | 第48页 |
| 2.2 细胞培养 | 第48页 |
| 2.3 Western blot实验 | 第48页 |
| 2.4 Transwell实验 | 第48页 |
| 2.5 细胞免疫荧光 | 第48页 |
| 2.6 统计学处理 | 第48-49页 |
| 3 结果 | 第49-53页 |
| 3.1 COE对HIF-1α、Twist1蛋白的影响 | 第49-50页 |
| 3.2 HIF-1α在COE抑制人肝癌HepG2细胞侵袭迁移中的作用 | 第50-51页 |
| 3.3 COE对HIF-1α/Twist1信号通路的影响 | 第51-53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 文献综述 | 第59-65页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第66-67页 |
