| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 名词术语及缩写 | 第12-18页 |
| 第一章 前言 | 第18-68页 |
| 1.1 概述 | 第18-19页 |
| 1.2 量子点的性质 | 第19-20页 |
| 1.3 量子点的应用 | 第20-22页 |
| 1.3.1 生物成像 | 第20页 |
| 1.3.2 疾病诊断与治疗 | 第20-22页 |
| 1.3.3 化学与生物传感 | 第22页 |
| 1.4 量子点的生物安全性研究 | 第22-50页 |
| 1.4.1 概述 | 第22-23页 |
| 1.4.2 量子点的细胞毒性表现及其评价方法 | 第23-29页 |
| 1.4.2.1 形貌改变 | 第24-25页 |
| 1.4.2.2 细胞死亡 | 第25-26页 |
| 1.4.2.3 氧化应激反应 | 第26-27页 |
| 1.4.2.4 基因毒性 | 第27-29页 |
| 1.4.3 量子点细胞毒性的影响因素 | 第29-34页 |
| 1.4.3.1 组成 | 第29-30页 |
| 1.4.3.2 粒径 | 第30-32页 |
| 1.4.3.3 表面性质 | 第32-34页 |
| 1.4.3.4 实验条件 | 第34页 |
| 1.4.4 量子点的细胞毒性机理 | 第34-38页 |
| 1.4.5 量子点的细胞生物动力学行为 | 第38-44页 |
| 1.4.5.1 量子点的细胞吸收 | 第38-41页 |
| 1.4.5.2 量子点的细胞分布 | 第41-42页 |
| 1.4.5.3 量子点的细胞代谢和清除 | 第42-44页 |
| 1.4.6 量子点生物安全性研究方法 | 第44-48页 |
| 1.4.6.1 毒理学方法 | 第44-45页 |
| 1.4.6.2 荧光方法 | 第45-46页 |
| 1.4.6.3 同步辐射技术 | 第46-47页 |
| 1.4.6.4 电感耦合等离子体质谱技术 | 第47-48页 |
| 1.4.7 量子点生物安全性研究的发展趋势 | 第48-50页 |
| 1.5 金属组学 | 第50-66页 |
| 1.5.1 金属组学概述 | 第50-52页 |
| 1.5.2 金属组学的研究手段 | 第52-65页 |
| 1.5.2.1 质谱技术 | 第52-57页 |
| 1.5.2.2 分离技术 | 第57-65页 |
| 1.5.2.3 其它分析技术 | 第65页 |
| 1.5.3 金属组学与量子点的生物安全性研究 | 第65-66页 |
| 1.6 立题思想 | 第66-68页 |
| 第二章 CdSe/ZnS量子点的细胞吸收、清除及其对HepG2细胞的毒性 | 第68-95页 |
| 2.1 引言 | 第68-70页 |
| 2.2 材料与方法 | 第70-76页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第70-72页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第72页 |
| 2.2.3 ICP-MS测定 | 第72-73页 |
| 2.2.4 细胞对QDs、Cd(Ⅱ)和Se(Ⅳ)的吸收 | 第73页 |
| 2.2.4.1 培育浓度的影响 | 第73页 |
| 2.2.4.2 培育时间的影响 | 第73页 |
| 2.2.5 细胞对QDs、Cd(Ⅱ)和Se(Ⅳ)的清除 | 第73页 |
| 2.2.6 激光共聚焦显微镜成像 | 第73-74页 |
| 2.2.7 细胞毒性考察 | 第74-76页 |
| 2.2.7.1 MTT分析 | 第74页 |
| 2.2.7.2 细胞形貌观察 | 第74页 |
| 2.2.7.3 AO/EB观察 | 第74页 |
| 2.2.7.4 谷胱甘肽分析 | 第74-75页 |
| 2.2.7.5 基因表达分析 | 第75-76页 |
| 2.3 实验结果 | 第76-91页 |
| 2.3.1 细胞对QDs、Cd(Ⅱ)和Se(Ⅳ)的吸收 | 第76-81页 |
| 2.3.1.1 培育浓度的影响 | 第76-79页 |
| 2.3.1.2 培育时间的影响 | 第79-81页 |
| 2.3.2 细胞对QDs、Cd(Ⅱ)和Se(Ⅳ)的清除 | 第81-84页 |
| 2.3.3 激光共聚焦显微镜成像 | 第84-85页 |
| 2.3.4 QDs、Cd(Ⅱ)和Se(Ⅳ)的细胞毒性 | 第85-87页 |
| 2.3.4.1 细胞成活率及形貌观察 | 第85-86页 |
| 2.3.4.2 凋亡分析 | 第86-87页 |
| 2.3.4.3 氧化应激 | 第87页 |
| 2.3.5 基因表达分析 | 第87-91页 |
| 2.4 讨论 | 第91-94页 |
| 2.4.1 HepG2细胞对QDs的吸收和清除 | 第91-92页 |
| 2.4.2 QDs对HepG2细胞的毒性 | 第92-94页 |
| 2.5 结论 | 第94-95页 |
| 第三章 CdSe/ZnS量子点在HepG2细胞中的形态及其变化分析 | 第95-119页 |
| 3.1 引言 | 第95-96页 |
| 3.2 材料与方法 | 第96-101页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第96-97页 |
| 3.2.2 细胞培养与共培育 | 第97页 |
| 3.2.3 细胞样品处理 | 第97页 |
| 3.2.4 SEC-ICP-MS检测 | 第97-98页 |
| 3.2.5 不同培育条件下细胞中的QDs形态研究 | 第98页 |
| 3.2.6 细胞中的总QDs、QD-1和QD-2含量测定 | 第98页 |
| 3.2.7 保留时间比较 | 第98-99页 |
| 3.2.8 QD-1中Cd/Se摩尔比测定 | 第99页 |
| 3.2.9 荧光检测 | 第99页 |
| 3.2.10 CdSe/ZnS量子点释放Cd和Se的速率考察 | 第99页 |
| 3.2.11 RPLC-ICP-MS/ESI-Q-TOF-MS分析 | 第99-101页 |
| 3.3 实验结果 | 第101-115页 |
| 3.3.1 CdSe/ZnS量子点在HepG2细胞中的形态 | 第101-103页 |
| 3.3.2 QD-1形态的表征 | 第103-105页 |
| 3.3.3 QD-2形态的表征 | 第105-108页 |
| 3.3.4 不同培育浓度下的形态 | 第108-110页 |
| 3.3.5 不同培育时间下的形态 | 第110-114页 |
| 3.3.6 不同清除时间下的形态 | 第114-115页 |
| 3.4 讨论 | 第115-118页 |
| 3.5 结论 | 第118-119页 |
| 第四章 CdSe/ZnS量子点培育HepG2细胞中QD-2形态的表征及其变化分析 | 第119-142页 |
| 4.1 引言 | 第119-120页 |
| 4.2 材料与方法 | 第120-123页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第120页 |
| 4.2.2 细胞培养 | 第120页 |
| 4.2.3 量子点培育及细胞样品处理 | 第120-121页 |
| 4.2.4 RPLC-ICP-MS/ESI-Q-TOF-MS分析 | 第121页 |
| 4.2.5 不同培育条件下,QD-2中金属硫蛋白的组成和含量变化分析 | 第121-123页 |
| 4.3 实验结果 | 第123-138页 |
| 4.3.1 QD-2的表征 | 第123-125页 |
| 4.3.2 QD-2中金属硫蛋白的组成和含量与培育浓度的关系 | 第125-129页 |
| 4.3.3 QD-2中金属硫蛋白的组成和含量与培育时间的关系 | 第129-134页 |
| 4.3.4 QD-2中金属硫蛋白的组成和含量与清除时间的关系 | 第134-138页 |
| 4.4 讨论 | 第138-141页 |
| 4.5 结论 | 第141-142页 |
| 第五章 总结 | 第142-144页 |
| 附图：不同条件下,其它三种QD-2的分析结果 | 第144-171页 |
| 附表：不同条件下,其它三种QD-2的ESI-Q-TOF-MS鉴定结果 | 第171-189页 |
| 参考文献 | 第189-216页 |
| 附录：作者在攻读博士学位期间已发表或待发表的论文 | 第216-217页 |
| 致谢 | 第217-218页 |
