| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-24页 |
| ·甲醛污染的来源 | 第12-13页 |
| ·甲醛的污染治理方法 | 第13-15页 |
| ·通风法 | 第13页 |
| ·温控法 | 第13页 |
| ·吸附法 | 第13页 |
| ·化学法 | 第13-14页 |
| ·反应法 | 第13-14页 |
| ·臭氧法 | 第14页 |
| ·负离子法 | 第14页 |
| ·催化氧化法 | 第14页 |
| ·生物法 | 第14-15页 |
| ·植物吸收法 | 第14-15页 |
| ·微生物降解法 | 第15页 |
| ·甲醛在微生物中的代谢途径 | 第15-20页 |
| ·甲醛代谢的同化途径 | 第16-18页 |
| ·丝氨酸循环 | 第16-17页 |
| ·核酮糖单磷酸途径(RuMP)途径 | 第17-18页 |
| ·甲基营养菌甲醛代谢的异化途径 | 第18-20页 |
| ·四氢叶酸(THF)途径 | 第18页 |
| ·四氢甲烷蝶呤(H_4MPT)途径 | 第18-19页 |
| ·谷胱甘肽(GSH/MySH)途径 | 第19-20页 |
| ·国内外研究现状 | 第20页 |
| ·本文研究的意义及内容 | 第20-21页 |
| 参考文献 | 第21-24页 |
| 第二章 Methylobacterium sp.XJLW菌株甲醛降解条件的研究 | 第24-36页 |
| ·引言 | 第24-25页 |
| ·材料 | 第25-26页 |
| ·菌株 | 第25页 |
| ·培养基及试剂 | 第25页 |
| ·药品与试剂 | 第25-26页 |
| ·仪器 | 第26页 |
| ·方法 | 第26-29页 |
| ·分光光度法测定甲醛浓度 | 第26-27页 |
| ·样品甲醛浓度的测定 | 第27页 |
| ·不同培养基组分及浓度对甲醛降解的影响 | 第27-28页 |
| ·不同氮源 | 第27页 |
| ·不同氮源浓度 | 第27页 |
| ·不同无机盐浓度 | 第27-28页 |
| ·不同微量元素浓度 | 第28页 |
| ·不同培养条件对甲醛降解的影响 | 第28页 |
| ·不同温度 | 第28页 |
| ·不同初始pH | 第28页 |
| ·不同接菌量对甲醛降解的影响 | 第28-29页 |
| ·最优降解条件下菌株对甲醛的降解过程 | 第29页 |
| ·结果与讨论 | 第29-34页 |
| ·不同培养基组分及浓度对甲醛降解的影响 | 第29-31页 |
| ·不同氮源 | 第29页 |
| ·不同氮源浓度 | 第29-30页 |
| ·不同无机盐浓度 | 第30页 |
| ·不同微量元素浓度 | 第30-31页 |
| ·不同培养条件对甲醛降解的影响 | 第31-32页 |
| ·不同温度 | 第31-32页 |
| ·不同初始pH | 第32页 |
| ·不同接菌量对甲醛降解的影响 | 第32-33页 |
| ·最优降解条件下菌株XJLW对甲醛的降解过程 | 第33-34页 |
| ·小结 | 第34页 |
| 参考文献 | 第34-36页 |
| 第三章 Methylobacterium sp.XJLW休止细胞对甲醛降解过程的研究 | 第36-51页 |
| ·引言 | 第36页 |
| ·材料 | 第36-38页 |
| ·菌株 | 第36页 |
| ·培养基及试剂 | 第36-37页 |
| ·药品与试剂 | 第37-38页 |
| ·仪器 | 第38页 |
| ·方法 | 第38-40页 |
| ·甲醇浓度的测定 | 第38页 |
| ·甲醛浓度的测定 | 第38-39页 |
| ·甲酸浓度的测定 | 第39页 |
| ·休止细胞的培养 | 第39页 |
| ·pH对休止细胞降解不同浓度甲醛的影响 | 第39-40页 |
| ·甲醛降解中间代谢产物分析 | 第40页 |
| ·结果与分析 | 第40-49页 |
| ·甲醇、甲醛、甲酸的校准曲线 | 第40-42页 |
| ·休止细胞的培养 | 第42页 |
| ·pH对休止细胞降解不同浓度甲醛的影响 | 第42-45页 |
| ·甲醛降解中间产物分析 | 第45-49页 |
| ·自然pH时甲醛、甲酸浓度的变化 | 第45页 |
| ·CaCO_3法调控pH时甲醛、甲酸浓度的变化 | 第45-46页 |
| ·CaCO_3法调控pH时甲醇、甲醛、甲酸浓度的变化 | 第46-49页 |
| ·小结 | 第49页 |
| 参考文献 | 第49-51页 |
| 第四章 Methylobacterium sp.XJLW菌株对甲醛降解过程的强化 | 第51-72页 |
| ·引言 | 第51-53页 |
| ·材料 | 第53-56页 |
| ·菌株和质粒 | 第53页 |
| ·培养基及试剂 | 第53-54页 |
| ·药品与试剂 | 第54-55页 |
| ·仪器 | 第55页 |
| ·PCR引物 | 第55-56页 |
| ·方法 | 第56-61页 |
| ·不同初始浓度甲醇为唯一碳源对XJLW菌生长的影响 | 第56页 |
| ·添加葡萄糖对XJLW菌生长的影响 | 第56页 |
| ·添加叶酸对XJLW菌株生长的影响 | 第56页 |
| ·构建甲醛激活酶Fae基因敲除载体 | 第56-61页 |
| ·引物设计与合成 | 第56页 |
| ·菌株XJLW基因组DNA的提取 | 第56-57页 |
| ·试剂盒快速小量提取质粒DNA | 第57-58页 |
| ·凝胶回收纯化DNA | 第58页 |
| ·PCR扩增 | 第58-59页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第59-60页 |
| ·转化大肠杆菌感受态细胞 | 第60页 |
| ·酶切反应 | 第60页 |
| ·连接反应 | 第60-61页 |
| ·结果与分析 | 第61-69页 |
| ·不同初始浓度甲醇为唯一碳源对XJLW菌生长的影响 | 第61页 |
| ·添加葡萄糖、叶酸对XJLW菌生长的影响 | 第61-64页 |
| ·构建甲醛激活酶Fae基因敲除载体 | 第64-69页 |
| ·甲醛激活酶(Fae)基因的获得 | 第64-66页 |
| ·卡那霉素(Kan)基因的获得 | 第66-67页 |
| ·中间载体pUC-1 8-Fae的构建和鉴定 | 第67-68页 |
| ·重组载体pUC18-5'Fae-Kan-3'Fae的构建和鉴定 | 第68-69页 |
| ·小结 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-72页 |
| 第五章 实验总结与展望 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第74页 |
