| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 第一章 综述 | 第11-23页 |
| ·桑黄的研究概况 | 第11-14页 |
| ·桑黄的活性作用 | 第11-13页 |
| ·桑黄子实体的化学成分 | 第13-14页 |
| ·衰老学说及其研究进展 | 第14-17页 |
| ·自由基学说 | 第14-15页 |
| ·生物分子自然交联说 | 第15页 |
| ·免疫学说 | 第15-16页 |
| ·线粒体DNA损伤学说 | 第16页 |
| ·其他学说 | 第16-17页 |
| ·抗衰老的实验研究方法 | 第17页 |
| ·抗衰老药物作用机制的研究进展 | 第17-20页 |
| ·AD与胆碱能学说 | 第18-19页 |
| ·AD与APP | 第19页 |
| ·HDAC蛋白家族 | 第19-20页 |
| ·其他学说 | 第20页 |
| ·桑黄抗衰老作用的研究进展 | 第20-21页 |
| ·课题目的意义及研究内容 | 第21-23页 |
| ·课题研究的目的意义 | 第21-22页 |
| ·课题研究的内容 | 第22-23页 |
| 第二章 桑黄子实体醇提物抗衰老活性萃取相的筛选 | 第23-35页 |
| ·引言 | 第23页 |
| ·实验材料,仪器及试剂配制 | 第23-25页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·实验试剂 | 第23-24页 |
| ·实验仪器 | 第24页 |
| ·溶剂配制 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-29页 |
| ·不同萃取相的制备 | 第25-26页 |
| 1. 子实体去杂质清洗 | 第25页 |
| 2. 乙醇回流提取 | 第25页 |
| 3. 有机相萃取 | 第25-26页 |
| ·不同有机萃取相对损伤的神经细胞的修复功能 | 第26-27页 |
| ·萃取相对损伤的PC12神经细胞的修复功能 | 第27页 |
| ·萃取相对损伤的Neuor-2A神经细胞的修复功能 | 第27页 |
| ·不同有机萃取相的清除自由基实验 | 第27-29页 |
| ·实验结果 | 第29-33页 |
| ·不同有机萃取相对神经损伤细胞的修复不同萃取相 | 第29-31页 |
| ·不同有机萃取相的清除自由基作用 | 第31-33页 |
| ·本章小结 | 第33-35页 |
| 第三章 抗衰老活性的单一化合物的筛选 | 第35-55页 |
| ·前言 | 第35页 |
| ·实验材料和试剂 | 第35-36页 |
| ·实验样品 | 第35页 |
| ·实验材料和样品配制 | 第35-36页 |
| ·实验仪器 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-38页 |
| ·子实体中化合物的分离纯化 | 第36-37页 |
| ·子实体中化合物的活性实验 | 第37-38页 |
| ·化合物理化常数和光谱数据 | 第38-47页 |
| ·化合物的分离 | 第38-39页 |
| ·化合物的理化常数和光谱数据 | 第39-43页 |
| ·化合物的结构鉴定 | 第43-47页 |
| ·化合物的活性实验 | 第47-52页 |
| ·化合物对损伤的PC12神经细胞的修复作用 | 第47-48页 |
| ·化合物对损伤的Neuro-2A神经细胞的修复作用 | 第48-49页 |
| ·清除超氧阴离子 | 第49-50页 |
| ·清除过氧化氢 | 第50-51页 |
| ·清除DPPH自由基 | 第51-52页 |
| ·清除自由基的IC_(50)值(μg/mL) | 第52页 |
| ·本章总结 | 第52-55页 |
| 第四章 ：活性化合物的抗衰老作用机制初步探究 | 第55-67页 |
| ·引言 | 第55-56页 |
| ·实验材料,仪器和溶液配制 | 第56-57页 |
| ·实验材料 | 第56页 |
| ·实验样品配制 | 第56页 |
| ·实验仪器 | 第56-57页 |
| ·实验方法 | 第57-62页 |
| ·体外抑制乙酰胆碱酯酶实验 | 第57页 |
| ·Western Blot检测BACE1和HDAC家族蛋白表达 | 第57-62页 |
| ·实验结果与讨论 | 第62-67页 |
| ·抑制乙酰胆碱酯酶实验结果 | 第62-63页 |
| ·免疫印迹结果分析 | 第63-65页 |
| ·实验讨论 | 第65-67页 |
| 全文总结 | 第67-69页 |
| 创新点 | 第69-71页 |
| 不足和展望 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 附录 | 第79-97页 |
| 硕士期间论文发表与参加会议 | 第97-99页 |
| 附件 | 第99页 |
