| 目录 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 主要缩略词表 | 第12-14页 |
| 第一部分 文献综述 | 第14-38页 |
| 第一章 植物雄性不育的研究 | 第14-30页 |
| 1 植物雄性不育及其类型 | 第14-15页 |
| 2 植物雄性不育研究进展 | 第15-27页 |
| ·植物雄性不育的形态学研究 | 第15页 |
| ·植物雄性不育的细胞学研究 | 第15-18页 |
| ·植物雄性不育的遗传学研究 | 第18-19页 |
| ·植物雄性不育的生理生化研究 | 第19-22页 |
| ·物质代谢与雄性不育 | 第19-20页 |
| ·能量代谢与雄性不育 | 第20页 |
| ·植物激素与雄性不育 | 第20-22页 |
| ·植物雄性不育的分子生物学研究 | 第22-26页 |
| ·雄性不育的分子机理研究 | 第22-23页 |
| ·雄性不育基因的克隆方法 | 第23-26页 |
| ·植物雄性不育种质的创制研究 | 第26-27页 |
| 3 植物雄性不育的应用 | 第27-30页 |
| ·雄性不育系在品种群体改良中的应用 | 第27-28页 |
| ·雄性不育系在杂种优势利用中的应用 | 第28-30页 |
| ·质核互作雄性不育系(CMS)的应用 | 第28-29页 |
| ·细胞核雄性不育系(GMS)的应用 | 第29-30页 |
| 第二章 芝麻雄性不育的研究 | 第30-36页 |
| 1 芝麻雄性不育材料及其来源 | 第30-31页 |
| 2 芝麻核雄性不育研究进展 | 第31-32页 |
| ·芝麻核雄性不育的形态学研究 | 第31-32页 |
| ·芝麻核雄性不育的细胞学研究 | 第32页 |
| ·芝麻核雄性不育的遗传学研究 | 第32页 |
| ·芝麻核雄性不育的生理生化研究 | 第32页 |
| 3 芝麻核雄性不育系的应用 | 第32-36页 |
| ·芝麻核雄性不育系在品种群体改良中的应用 | 第32-33页 |
| ·芝麻核雄性不育系在杂种优势利用中的应用 | 第33页 |
| ·芝麻核雄性不育系应用展望 | 第33-36页 |
| 本研究的目的和意义 | 第36-38页 |
| 第二部分 研究报告 | 第38-91页 |
| 第三章 芝麻核雄性不育小孢子败育过程的超微结构观察 | 第38-48页 |
| 1 材料与方法 | 第38页 |
| ·试验材料 | 第38页 |
| ·试验方法 | 第38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-41页 |
| ·芝麻花粉发育时期划分 | 第38-39页 |
| ·可育与不育花药的对比观察结果 | 第39-41页 |
| ·小孢子母细胞形成期 | 第39页 |
| ·减数分裂期 | 第39-40页 |
| ·四分体期 | 第40页 |
| ·单核小孢子早期 | 第40页 |
| ·单核小孢子中期 | 第40-41页 |
| ·单核小孢子晚期 | 第41页 |
| ·花粉成熟期 | 第41页 |
| 3 讨论 | 第41-42页 |
| ·小孢子母细胞壁形状不规则与雄性不育的关系 | 第41页 |
| ·小孢子外壁发育异常及绒毡层延迟降解与雄性不育的关系 | 第41-42页 |
| 4 结论 | 第42-48页 |
| 第四章 芝麻核雄性不育花药败育过程中激素的变化 | 第48-56页 |
| 1 材料与方法 | 第48页 |
| ·试验材料 | 第48页 |
| ·试验方法 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-51页 |
| ·IAA含量的动态变化 | 第48-49页 |
| ·GA_3含量的动态变化 | 第49-50页 |
| ·ZR含量的动态变化 | 第50页 |
| ·ABA含量的动态变化 | 第50-51页 |
| 3 讨论 | 第51-53页 |
| ·IAA与雄性不育 | 第51-52页 |
| ·GA_3与雄性不育 | 第52页 |
| ·ZR与雄性不育 | 第52页 |
| ·ABA与雄性不育 | 第52-53页 |
| 4 结论 | 第53-56页 |
| 第五章 芝麻核雄性不育相关基因的克隆及研究 | 第56-91页 |
| 1 材料与方法 | 第56-71页 |
| ·试验材料 | 第56-58页 |
| ·植物材料 | 第56页 |
| ·菌株和质粒 | 第56页 |
| ·酶、试剂和培养基 | 第56-57页 |
| ·通用引物 | 第57-58页 |
| ·试验方法 | 第58-71页 |
| ·总RNA的提取 | 第58页 |
| ·总RNA中DNA的消化 | 第58页 |
| ·mRNA反转录 | 第58-59页 |
| ·差异显示试验方法 | 第59-62页 |
| ·cDNA片段的扩增 | 第59页 |
| ·变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第59-60页 |
| ·差异片段的同收、克隆与测序 | 第60-62页 |
| ·序列的生物信息学分析 | 第62页 |
| ·半定量RT-PCR分析 | 第62-63页 |
| ·同源克隆 | 第63-64页 |
| ·5'RACE | 第64-65页 |
| ·全长基因的实时荧光PCR分析 | 第65-66页 |
| ·载体构建 | 第66-69页 |
| ·载体构建的引物 | 第66-67页 |
| ·SiHSP原核表达载体的构建 | 第67页 |
| ·SiXET植物表达载体的构建 | 第67-68页 |
| ·SiXET干扰载体的构建 | 第68-69页 |
| ·表达分析 | 第69-71页 |
| ·SiHSP的原核表达分析 | 第69-70页 |
| ·SiXET植物表达载体的瞬时表达分析 | 第70-71页 |
| 2 结果与分析 | 第71-86页 |
| ·RNA提取质量检测 | 第71页 |
| ·差异显示试验结果 | 第71-73页 |
| ·半定量RT-PCR结果 | 第73页 |
| ·差异表达片段的功能预测 | 第73-77页 |
| ·L952的BLASTX结果及多重序列比对结果 | 第73-75页 |
| ·L953与L965的BLASTX结果 | 第75-77页 |
| ·L963的BLASTX结果 | 第77页 |
| ·差异表达基因全长的克隆及表达分析 | 第77-86页 |
| ·SiXET全长的克隆及表达分析 | 第77-82页 |
| ·SiXET全长的克隆 | 第77-78页 |
| ·SiXET序列分析 | 第78-80页 |
| ·SiXET的q-PCR差异表达分析 | 第80-81页 |
| ·SiXET的植物表达载体的验证及愈伤组织瞬时表达分析 | 第81-82页 |
| ·SiXET干扰载体的验证 | 第82页 |
| ·SiHSP全长的克隆及表达分析 | 第82-86页 |
| ·SiHSP全长的克隆 | 第82-83页 |
| ·SiHSP序列分析 | 第83-85页 |
| ·SiHSP的q-PCR差异表达分析 | 第85页 |
| ·SiHSP的原核表达分析 | 第85-86页 |
| 3 讨论 | 第86-90页 |
| ·SiXET相关讨论 | 第87-88页 |
| ·SiHSP相关讨论 | 第88-90页 |
| 4 结论 | 第90-91页 |
| 全文结论 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-106页 |
| 论文写作与发表 | 第106-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
