| 中文摘要 | 第12-13页 |
| ABSTRACT | 第13-14页 |
| 缩写 | 第15-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-22页 |
| 1.1 绿球藻Chlorococcum sp.GD | 第16页 |
| 1.2 多糖的主要功能 | 第16-17页 |
| 1.2.1 多糖的抗氧化和抗衰老作用 | 第17页 |
| 1.2.2 多糖的抗辐射、抗菌和抗病毒作用 | 第17页 |
| 1.2.3 多糖的抗肿瘤和免疫调节作用 | 第17页 |
| 1.2.4 多糖的降血脂血糖作用 | 第17页 |
| 1.3 藻多糖的提取方法 | 第17-18页 |
| 1.3.1 热水浸提法 | 第17页 |
| 1.3.2 微波提取法 | 第17-18页 |
| 1.3.3 超声辅助提取法 | 第18页 |
| 1.3.4 酶法提取 | 第18页 |
| 1.4 多糖的分离纯化 | 第18页 |
| 1.5 多糖的结构测定 | 第18-19页 |
| 1.5.1 化学分析法 | 第18-19页 |
| 1.5.2 仪器分析法 | 第19页 |
| 1.6 本文的研究目的、内容及意义 | 第19-22页 |
| 1.6.1 研究目的和意义 | 第19页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第19-22页 |
| 第二章 绿球藻多糖的分离纯化 | 第22-36页 |
| 2.1 实验材料和设备 | 第22-24页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.2 主要实验设备 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.2.1 绿球藻多糖的提取 | 第24-25页 |
| 2.2.2 测定多糖含量 | 第25页 |
| 2.2.3 分离绿球藻粗多糖 | 第25-26页 |
| 2.2.4 Sephadex G-150 凝胶柱层析纯化 | 第26页 |
| 2.2.5 紫外可见光谱扫描 | 第26页 |
| 2.2.6 多糖的红外光谱扫描(FTIR) | 第26页 |
| 2.2.7 高效凝胶色谱法进行测定绿球藻纯多糖分子量 | 第26页 |
| 2.2.8 液相色谱法测定绿球藻纯多糖的单糖组成 | 第26-27页 |
| 2.2.9 绿球藻多糖化学性质的鉴定 | 第27-28页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第28-35页 |
| 2.3.1 绘制葡萄糖标准曲线 | 第28页 |
| 2.3.2 绿球藻多糖DEAE-52 纤维素柱层析初步分离纯化 | 第28-29页 |
| 2.3.3 Sephadex G-150 葡聚糖凝胶进一步纯化 | 第29-30页 |
| 2.3.4 紫外图谱分析 | 第30页 |
| 2.3.5 绿球藻纯多糖的红外光谱分析 | 第30-31页 |
| 2.3.6 测定已知分子量的葡聚糖 | 第31-32页 |
| 2.3.7 绿球藻多糖的分子量 | 第32-33页 |
| 2.3.8 绿球藻纯多糖的单糖组成 | 第33-34页 |
| 2.3.9 绿球藻多糖化学性质的鉴定 | 第34-35页 |
| 2.4 小结 | 第35-36页 |
| 第三章 绿球藻多糖的抗氧化活性研究 | 第36-44页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第36-37页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 3.1.2 实验主要仪器 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 DPPH自由基的清除活性测定 | 第37页 |
| 3.2.2 对羟基自由基的清除作用 | 第37-38页 |
| 3.2.3 对超氧阴离子自由基的清除作用 | 第38页 |
| 3.2.4 ABTS自由基清除能力测定 | 第38页 |
| 3.2.5 还原能力的测定 | 第38-39页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第39-43页 |
| 3.3.1 绿球藻多糖对DPPH自由基的清除能力 | 第39-40页 |
| 3.3.2 绿球藻多糖对羟基自由基的清除能力 | 第40页 |
| 3.3.3 绿球藻多糖对超氧阴离子的清除能力 | 第40-41页 |
| 3.3.4 ABTS自由基清除能力 | 第41-42页 |
| 3.3.5 还原力测定 | 第42-43页 |
| 3.4 小结 | 第43-44页 |
| 第四章 绿球藻多糖抑菌活性研究 | 第44-56页 |
| 4.1 实验材料和仪器 | 第44-46页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第44-45页 |
| 4.1.2 试剂 | 第45页 |
| 4.1.3 实验主要仪器 | 第45-46页 |
| 4.2 实验方法 | 第46-48页 |
| 4.2.1 制作培养基 | 第46页 |
| 4.2.2 绿球藻多糖样品溶液的配制 | 第46页 |
| 4.2.3 活化菌种和制备菌液 | 第46页 |
| 4.2.4 抑菌活性测定 | 第46-47页 |
| 4.2.5 测定最小抑菌浓度(MIC) | 第47页 |
| 4.2.6 测定生长曲线 | 第47页 |
| 4.2.7 测定细胞膜通透性 | 第47页 |
| 4.2.8 溶解氧的测定方法 | 第47-48页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第48-53页 |
| 4.3.1 绿球藻多糖对细菌的抑菌试验结果 | 第48页 |
| 4.3.2 绿球藻多糖对真菌的抑菌试验结果 | 第48-49页 |
| 4.3.3 分析绿球藻纯多糖的最小抑菌浓度 | 第49-50页 |
| 4.3.4 绿球藻多糖对细菌生长曲线的影响 | 第50-51页 |
| 4.3.5 绿球藻多糖对真菌生长曲线的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.6 绿球藻纯多糖对细胞膜渗透性的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.7 金黄色葡萄球菌溶氧量的变化 | 第53页 |
| 4.4 小结 | 第53-56页 |
| 第五章 结论与展望 | 第56-58页 |
| 5.1 结论 | 第56页 |
| 5.2 展望 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-71页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 个人简况及联系方式 | 第73-75页 |
