| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 1 前言 | 第10-18页 |
| ·植物耐盐机制 | 第10-14页 |
| ·生长发育及生理调节机制 | 第10-11页 |
| ·离子吸收、转运及调节机制 | 第11页 |
| ·渗透调节机制 | 第11-12页 |
| ·植物激素调节机制 | 第12页 |
| ·光合作用途径的转变机制 | 第12页 |
| ·抗氧化防御机制 | 第12-14页 |
| ·PHGPx基本性质 | 第14-15页 |
| ·海马齿研究概述 | 第15-16页 |
| ·目的意义 | 第16-17页 |
| ·本研究的技术路线 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-41页 |
| ·材料与试剂 | 第18-19页 |
| ·植物材料 | 第18页 |
| ·菌株和质粒 | 第18页 |
| ·生化试剂 | 第18页 |
| ·仪器及数据处理 | 第18-19页 |
| ·方法与步骤 | 第19-41页 |
| ·植物体蛋白提取及酶活测定 | 第19-20页 |
| ·RNA提取 | 第20-22页 |
| ·cDNA的合成 | 第22页 |
| ·SpPHOPx基因的3’RACE和5’RACE扩增 | 第22-28页 |
| ·SpPHGPx全长cDNA的PCR扩增 | 第28-29页 |
| ·PHGPx的RT-PCR表达分析 | 第29-31页 |
| ·原核表达载体的构建与鉴定 | 第31-34页 |
| ·植物表达载体的构建 | 第34-36页 |
| ·遗传转化 | 第36-41页 |
| 3 结果与分析 | 第41-60页 |
| ·SpPHGPx酶活的测定 | 第41-44页 |
| ·三种蛋白提取液的提取效果比较 | 第41页 |
| ·Nacl对SpPHGPx酶活力的影响 | 第41-42页 |
| ·H_2O_2对SpPHGPx酶活力的影响 | 第42-43页 |
| ·DMTU处理后NaCl对叶片SpPHGPx酶活力的影响 | 第43页 |
| ·DMTU处理后H_2O_2对SpPHGPx酶活力的影响 | 第43-44页 |
| ·RNA的提取 | 第44-45页 |
| ·SpPHGPx基因的克隆 | 第45-47页 |
| ·RACE技术扩增SpPHGPx 3’和5’末端 | 第45页 |
| ·SpPHGPx全长的克隆 | 第45-47页 |
| ·生物信息学分析 | 第47-53页 |
| ·SpPHGPx蛋白质的特性分析 | 第47-49页 |
| ·信号肽、疏水性及跨膜区预测 | 第49-51页 |
| ·SpPHGPx系统进化树分析 | 第51-52页 |
| ·SpPHGPx蛋白的亚细胞定位功能分类 | 第52-53页 |
| ·SpPHGPx的RT-PCR分析 | 第53-56页 |
| ·指数增长期的确定 | 第53页 |
| ·SpPHGPx在不同组织的表达分析 | 第53-54页 |
| ·不同时长海水处理对叶片SpPHGPx表达的影响 | 第54页 |
| ·不同浓度离子处理对叶片SpPHGPx表达的影响 | 第54-56页 |
| ·原核表达 | 第56-57页 |
| ·原核表达载体的构建 | 第56页 |
| ·SpPHGPx的表达 | 第56-57页 |
| ·遗传转化 | 第57-60页 |
| ·SpPHGPx基因的植物表达载体构建 | 第57页 |
| ·植物表达载体转化农杆菌 | 第57-58页 |
| ·转基因烟草的PCR检测 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-63页 |
| ·关于材料的处理 | 第60页 |
| ·关于逆境胁迫与SpPHGPx活性的分析 | 第60-61页 |
| ·关于SpPHGPx基因表达的分析 | 第61-62页 |
| ·关于PHGPx功能的研究 | 第62-63页 |
| 5 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
