| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 缩略词表 | 第8-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-22页 |
| 参考文献 | 第18-22页 |
| 第二章 搭载PRP的PLEL水凝胶在皮肤缺损修复中的应用 | 第22-58页 |
| 2.1 前言 | 第22-24页 |
| 2.2 材料和方法 | 第24-35页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第24-25页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.3 主要试剂的配制 | 第26页 |
| 2.2.4 主要仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.5 PDLLA-PEG-PDLLA三嵌段多聚物的制备及结构表征 | 第27-28页 |
| 2.2.5.1 PDLLA-PEG-PDLLA多聚物的制备 | 第27页 |
| 2.2.5.2 PDLLA-PEG-PDLLA多聚物的结构表征 | 第27-28页 |
| 2.2.6 PDLLA-PEG-PDLLA多聚物的理化性质及水凝胶性质 | 第28-29页 |
| 2.2.6.1 热失重分析 | 第28页 |
| 2.2.6.2 PLEL水凝胶的制备 | 第28页 |
| 2.2.6.3 PLEL水凝胶的温度依赖型相转变行为研究 | 第28页 |
| 2.2.6.4 PLEL水凝胶的流变学分析 | 第28-29页 |
| 2.2.7 HUVECs和L929的分离、培养、冻存和复苏 | 第29-30页 |
| 2.2.7.1 HUVECs和L929的分离和培养 | 第29-30页 |
| 2.2.7.2 HUVECs和L929的冻存和复苏 | 第30页 |
| 2.2.8 PLEL浸提液的制备及其对HUVECs和L929的细胞毒作用检测 | 第30-31页 |
| 2.2.9 PRP及PRP/PLEL的制备 | 第31页 |
| 2.2.10 PRP和PRP/PLEL中的PDGF-BB缓释研究 | 第31页 |
| 2.2.11 PRP和PRP/PLEL对HUVECs迁移和成管的作用 | 第31-32页 |
| 2.2.11.1 PRP和PRP/PLEL对HUVECs迁移的作用 | 第31-32页 |
| 2.2.11.2 HUVECs在PRP和PRP/PLEL中的成管能力 | 第32页 |
| 2.2.12 动物实验及分组 | 第32页 |
| 2.2.13 伤口闭合情况测量 | 第32-33页 |
| 2.2.14 Microfil灌注和微计算机断层扫描技术（micro-computed tomography, Micro-CT）检测 | 第33页 |
| 2.2.15 组织学检测 | 第33-34页 |
| 2.2.16 免疫组化及免疫荧光检测 | 第34-35页 |
| 2.2.17 统计学分析 | 第35页 |
| 2.3 结果 | 第35-52页 |
| 2.3.1 PDLLA-PEG-PDLLA多聚物的合成和结构表征 | 第35-37页 |
| 2.3.2 PDLLA-PEG-PDLLA多聚物的理化性质及水凝胶性质 | 第37-42页 |
| 2.3.2.1 热失重分析 | 第37-38页 |
| 2.3.2.2 PLEL水凝胶的制备及其温敏性的初步描述 | 第38-39页 |
| 2.3.2.3 PLEL水凝胶的温度依赖型相转变行为研究 | 第39-40页 |
| 2.3.2.4 PLEL水凝胶的流变学分析 | 第40-42页 |
| 2.3.3 HUVECs和L929的分离和培养 | 第42页 |
| 2.3.4 PLEL水凝胶及其浸提液对HUVECs和L929的细胞毒作用检测 | 第42-43页 |
| 2.3.5 PRP和PRP/PLEL中的PDGF-BB释放曲线 | 第43页 |
| 2.3.6 PRP和PRP/PLEL对HUVECs迁移和成管的作用 | 第43-45页 |
| 2.3.7 PRP/PLEL促进皮肤全层缺损的愈合 | 第45-48页 |
| 2.3.8 PRP/PLEL促进皮肤缺损处的血管新生 | 第48-52页 |
| 2.4 讨论 | 第52-54页 |
| 2.5 结论 | 第54页 |
| 2.6 参考文献 | 第54-58页 |
| 第三章 搭载DFO的PLGA-PEG-PLGA微球在骨缺损修复中的应用 | 第58-98页 |
| 3.1 前言 | 第58-61页 |
| 3.2 材料和方法 | 第61-74页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第61页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第61-62页 |
| 3.2.3 主要试剂的配制 | 第62页 |
| 3.2.4 主要仪器 | 第62-63页 |
| 3.2.5 PLGA-PEG-PLGA三嵌段多聚物的制备 | 第63页 |
| 3.2.6 PLGA-PEG-PLGA微球及DFO/PLGA-PEG-PLGA微球的制备和表征 | 第63-64页 |
| 3.2.6.1 PLGA-PEG-PLGA微球及DFO/PLGA-PEG-PLGA微球的制备 | 第63-64页 |
| 3.2.6.2 DFO/PLGA-PEG-PLGA微球的表征 | 第64页 |
| 3.2.7 DFO/PLGA-PEG-PLGA微球中的DFO缓释研究 | 第64-65页 |
| 3.2.8 BMSCs和HUVECs的分离、培养、鉴定、冻存和复苏 | 第65-67页 |
| 3.2.8.1 BMSCs和HUVECs的分离和培养 | 第65-66页 |
| 3.2.8.2 BMSCs的鉴定 | 第66页 |
| 3.2.8.3 BMSCs和HUVECs的冻存和复苏 | 第66-67页 |
| 3.2.9 DFO和DFO/PLGA-PEG-PLGA微球对HUVECs和BMSCs增殖的影响 | 第67页 |
| 3.2.10 DFO和DFO/PLGA-PEG-PLGA微球对HUVECs和BMSCs分泌VEGF和BMP-2的作用 | 第67-68页 |
| 3.2.11 过量铁剂和DFO对BMSCs成骨分化的影响 | 第68-70页 |
| 3.2.11.1 ARS检测 | 第68页 |
| 3.2.11.2 ALP活性检测 | 第68-69页 |
| 3.2.11.3 RNA提取、RT-PCR检测 | 第69-70页 |
| 3.2.12 Western Blot及DFO促进BMSCs成骨分化机制的初步探讨 | 第70-71页 |
| 3.2.13 动物实验及分组 | 第71-72页 |
| 3.2.14 Micro-CT检测 | 第72页 |
| 3.2.15 硬组织切片及检测 | 第72-73页 |
| 3.2.16 免疫组化检测 | 第73-74页 |
| 3.2.17 统计学分析 | 第74页 |
| 3.3 结果 | 第74-87页 |
| 3.3.1 PLGA-PEG-PLGA微球及DFO/PLGA-PEG-PLGA微球的制备和表征 | 第74-75页 |
| 3.3.2 DFO/PLGA-PEG-PLGA微球中的DFO缓释研究 | 第75页 |
| 3.3.3 细胞的分离、培养和鉴定 | 第75-77页 |
| 3.3.4 DFO和DFO/PLGA-PEG-PLGA微球对HUVECs和BMSCs增殖的影响 | 第77-78页 |
| 3.3.5 DFO和DFO/PLGA-PEG-PLGA微球对HUVECs和BMSCs分泌VEGF和BMP-2的作用 | 第78-80页 |
| 3.3.6 过量铁剂和DFO对BMSCs成骨分化的影响 | 第80-82页 |
| 3.3.7 Western Blot及DFO促进BMSCs成骨分化机制的初步探讨 | 第82-84页 |
| 3.3.8 搭载DFO/PLGA-PEG-PLGA微球的β-TCP组织工程支架促进大鼠极量颅骨缺损的修复 | 第84-87页 |
| 3.4 讨论 | 第87-89页 |
| 3.5 结论 | 第89-90页 |
| 3.6 参考文献 | 第90-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 博士在读期间发表的学术论文 | 第99-101页 |
