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慈姑多糖的亚临界水萃取、结构表征及其免疫活性研究

摘要第5-7页
abstract第7-9页
第一章 绪论第14-21页
    1.1 慈姑的研究概况第14-15页
        1.1.1 慈姑简述第14页
        1.1.2 慈姑的营养和功能活性第14-15页
    1.2 多糖的研究概况第15-17页
        1.2.1 多糖的萃取方法第15页
        1.2.2 多糖的纯化第15-16页
        1.2.3 多糖的结构分析第16页
        1.2.4 多糖的活性研究第16-17页
    1.3 亚临界水萃取法的研究进展第17-19页
        1.3.1 亚临界水萃取法简介第17页
        1.3.2 亚临界水萃取法的影响因素第17-18页
        1.3.3 亚临界水萃取法的应用及发展概况第18-19页
        1.3.4 亚临界水萃取法的局限性第19页
    1.4 本课题的研究意义和主要内容第19-21页
        1.4.1 本课题研究意义第19页
        1.4.2 主要研究内容第19-21页
第二章 慈姑多糖的亚临界水萃取及其抗氧化活性研究第21-32页
    引言第21页
    2.1 实验材料第21-22页
        2.1.1 实验材料和试剂第21页
        2.1.2 主要仪器和设备第21-22页
    2.2 实验方法第22-24页
        2.2.1 慈姑的预处理第22页
        2.2.2 慈姑粉基本成分含量的测定第22页
        2.2.3 多糖含量的测定第22页
        2.2.4 亚临界水萃取慈姑多糖工艺设计第22-23页
        2.2.5 亚临界水和传统热水萃取慈姑多糖第23页
        2.2.6 还原能力的测定第23页
        2.2.7 DPPH·清除率的测定第23-24页
        2.2.8 ABTS~+·清除率的测定第24页
    2.3 结果与分析第24-31页
        2.3.1 慈姑粉末基本成分的测定第24页
        2.3.2 标准曲线绘制第24-25页
        2.3.3 单因素实验结果与分析第25-27页
        2.3.4 正交试验结果与分析第27页
        2.3.5 慈姑多糖的验证试验第27-28页
        2.3.6 与传统热水萃取法比较第28-29页
        2.3.7 慈姑多糖的还原能力第29页
        2.3.8 慈姑多糖对DPPH·清除能力第29-30页
        2.3.9 慈姑多糖对ABTS+·清除能力第30-31页
    2.4 本章小结第31-32页
第三章 慈姑多糖的分离纯化及结构表征第32-55页
    引言第32页
    3.1 实验材料第32-33页
        3.1.1 实验材料与试剂第32页
        3.1.2 主要仪器与设备第32-33页
    3.2 实验方法第33-35页
        3.2.1 DEAE-52纤维素柱第33页
        3.2.2 SephadexG-100柱层析第33-34页
        3.2.3 糖醛酸含量的测定第34页
        3.2.4 纯度鉴定和相对分子量测定第34页
        3.2.5 单糖组成测定第34页
        3.2.6 紫外光谱扫描第34页
        3.2.7 红外光谱扫描第34页
        3.2.8 部分酸水解第34页
        3.2.9 高碘酸氧化第34-35页
        3.2.10 Smith降解第35页
        3.2.11 刚果红分析第35页
        3.2.12 圆二色谱分析第35页
        3.2.13 扫描电镜分析第35页
        3.2.14 原子力显微镜分析第35页
    3.3 结果与分析第35-54页
        3.3.1 DEAE-52纤维素柱分离第35-36页
        3.3.2 SephadexG-100凝胶柱层析分离纯化第36页
        3.3.3 慈姑多糖的均一性及分子量第36-38页
        3.3.4 慈姑多糖的单糖组成分析第38-40页
        3.3.5 慈姑多糖的紫外光谱分析第40-41页
        3.3.6 慈姑多糖的红外光谱的分析第41-43页
        3.3.7 慈姑多糖的部分酸水解分析第43-44页
        3.3.8 慈姑多糖的高碘酸氧化第44-45页
        3.3.9 慈姑多糖的Smith降解分析第45-47页
        3.3.10 慈姑多糖的刚果红分析第47-48页
        3.3.11 圆二色谱分析多糖构象和结构第48-51页
        3.3.12 扫描电镜观察多糖的超微结构第51-53页
        3.3.13 原子力显微镜分析多糖的形态和尺寸第53-54页
    3.4 本章小结第54-55页
第四章 慈姑多糖的体外免疫活性研究第55-68页
    引言第55页
    4.1 实验材料第55-56页
        4.1.1 实验材料和试剂第55-56页
        4.1.2 实验仪器第56页
        4.1.3 主要试剂配制第56页
    4.2 实验方法第56-58页
        4.2.1 细胞的复苏、传代和冻存第56页
        4.2.2 巨噬细胞RAW264.7增殖活性实验第56-57页
        4.2.3 巨噬细胞RAW264.7吞噬中性红能力实验第57页
        4.2.4 HepG2细胞增殖的抑制作用第57页
        4.2.5 慈姑多糖诱导巨噬细胞RAW264.7对HepG2细胞增殖的抑制作用第57页
        4.2.6 巨噬细胞RAW264.7释放NO实验第57页
        4.2.7 巨噬细胞RAW264.7中TNF-α和IL-10的表达第57-58页
        4.2.8 数据统计第58页
    4.3 结果与分析第58-66页
        4.3.1 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对巨噬细胞增殖的影响第58-60页
        4.3.2 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对巨噬细胞的吞噬能力的影响第60页
        4.3.3 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对HepG2细胞增殖的影响第60页
        4.3.4 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对诱导巨噬细胞抑制HepG2细胞增殖的影响第60-62页
        4.3.5 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对巨噬细胞释放NO的影响第62-63页
        4.3.6 Westernblot检测RAW264.7分泌的细胞因子第63-66页
    4.4 本章小结第66-68页
第五章 结论与展望第68-70页
    5.1 结论第68页
    5.2 展望第68-70页
参考文献第70-79页
致谢第79-80页
在校期间发表论文第80页

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