| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-21页 |
| 1.1 慈姑的研究概况 | 第14-15页 |
| 1.1.1 慈姑简述 | 第14页 |
| 1.1.2 慈姑的营养和功能活性 | 第14-15页 |
| 1.2 多糖的研究概况 | 第15-17页 |
| 1.2.1 多糖的萃取方法 | 第15页 |
| 1.2.2 多糖的纯化 | 第15-16页 |
| 1.2.3 多糖的结构分析 | 第16页 |
| 1.2.4 多糖的活性研究 | 第16-17页 |
| 1.3 亚临界水萃取法的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.3.1 亚临界水萃取法简介 | 第17页 |
| 1.3.2 亚临界水萃取法的影响因素 | 第17-18页 |
| 1.3.3 亚临界水萃取法的应用及发展概况 | 第18-19页 |
| 1.3.4 亚临界水萃取法的局限性 | 第19页 |
| 1.4 本课题的研究意义和主要内容 | 第19-21页 |
| 1.4.1 本课题研究意义 | 第19页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第19-21页 |
| 第二章 慈姑多糖的亚临界水萃取及其抗氧化活性研究 | 第21-32页 |
| 引言 | 第21页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验材料和试剂 | 第21页 |
| 2.1.2 主要仪器和设备 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.2.1 慈姑的预处理 | 第22页 |
| 2.2.2 慈姑粉基本成分含量的测定 | 第22页 |
| 2.2.3 多糖含量的测定 | 第22页 |
| 2.2.4 亚临界水萃取慈姑多糖工艺设计 | 第22-23页 |
| 2.2.5 亚临界水和传统热水萃取慈姑多糖 | 第23页 |
| 2.2.6 还原能力的测定 | 第23页 |
| 2.2.7 DPPH·清除率的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.8 ABTS~+·清除率的测定 | 第24页 |
| 2.3 结果与分析 | 第24-31页 |
| 2.3.1 慈姑粉末基本成分的测定 | 第24页 |
| 2.3.2 标准曲线绘制 | 第24-25页 |
| 2.3.3 单因素实验结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.3.4 正交试验结果与分析 | 第27页 |
| 2.3.5 慈姑多糖的验证试验 | 第27-28页 |
| 2.3.6 与传统热水萃取法比较 | 第28-29页 |
| 2.3.7 慈姑多糖的还原能力 | 第29页 |
| 2.3.8 慈姑多糖对DPPH·清除能力 | 第29-30页 |
| 2.3.9 慈姑多糖对ABTS+·清除能力 | 第30-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 慈姑多糖的分离纯化及结构表征 | 第32-55页 |
| 引言 | 第32页 |
| 3.1 实验材料 | 第32-33页 |
| 3.1.1 实验材料与试剂 | 第32页 |
| 3.1.2 主要仪器与设备 | 第32-33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 DEAE-52纤维素柱 | 第33页 |
| 3.2.2 SephadexG-100柱层析 | 第33-34页 |
| 3.2.3 糖醛酸含量的测定 | 第34页 |
| 3.2.4 纯度鉴定和相对分子量测定 | 第34页 |
| 3.2.5 单糖组成测定 | 第34页 |
| 3.2.6 紫外光谱扫描 | 第34页 |
| 3.2.7 红外光谱扫描 | 第34页 |
| 3.2.8 部分酸水解 | 第34页 |
| 3.2.9 高碘酸氧化 | 第34-35页 |
| 3.2.10 Smith降解 | 第35页 |
| 3.2.11 刚果红分析 | 第35页 |
| 3.2.12 圆二色谱分析 | 第35页 |
| 3.2.13 扫描电镜分析 | 第35页 |
| 3.2.14 原子力显微镜分析 | 第35页 |
| 3.3 结果与分析 | 第35-54页 |
| 3.3.1 DEAE-52纤维素柱分离 | 第35-36页 |
| 3.3.2 SephadexG-100凝胶柱层析分离纯化 | 第36页 |
| 3.3.3 慈姑多糖的均一性及分子量 | 第36-38页 |
| 3.3.4 慈姑多糖的单糖组成分析 | 第38-40页 |
| 3.3.5 慈姑多糖的紫外光谱分析 | 第40-41页 |
| 3.3.6 慈姑多糖的红外光谱的分析 | 第41-43页 |
| 3.3.7 慈姑多糖的部分酸水解分析 | 第43-44页 |
| 3.3.8 慈姑多糖的高碘酸氧化 | 第44-45页 |
| 3.3.9 慈姑多糖的Smith降解分析 | 第45-47页 |
| 3.3.10 慈姑多糖的刚果红分析 | 第47-48页 |
| 3.3.11 圆二色谱分析多糖构象和结构 | 第48-51页 |
| 3.3.12 扫描电镜观察多糖的超微结构 | 第51-53页 |
| 3.3.13 原子力显微镜分析多糖的形态和尺寸 | 第53-54页 |
| 3.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第四章 慈姑多糖的体外免疫活性研究 | 第55-68页 |
| 引言 | 第55页 |
| 4.1 实验材料 | 第55-56页 |
| 4.1.1 实验材料和试剂 | 第55-56页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第56页 |
| 4.1.3 主要试剂配制 | 第56页 |
| 4.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 4.2.1 细胞的复苏、传代和冻存 | 第56页 |
| 4.2.2 巨噬细胞RAW264.7增殖活性实验 | 第56-57页 |
| 4.2.3 巨噬细胞RAW264.7吞噬中性红能力实验 | 第57页 |
| 4.2.4 HepG2细胞增殖的抑制作用 | 第57页 |
| 4.2.5 慈姑多糖诱导巨噬细胞RAW264.7对HepG2细胞增殖的抑制作用 | 第57页 |
| 4.2.6 巨噬细胞RAW264.7释放NO实验 | 第57页 |
| 4.2.7 巨噬细胞RAW264.7中TNF-α和IL-10的表达 | 第57-58页 |
| 4.2.8 数据统计 | 第58页 |
| 4.3 结果与分析 | 第58-66页 |
| 4.3.1 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对巨噬细胞增殖的影响 | 第58-60页 |
| 4.3.2 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对巨噬细胞的吞噬能力的影响 | 第60页 |
| 4.3.3 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对HepG2细胞增殖的影响 | 第60页 |
| 4.3.4 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对诱导巨噬细胞抑制HepG2细胞增殖的影响 | 第60-62页 |
| 4.3.5 SWE-SSP、SSP-W1和SSP-S1对巨噬细胞释放NO的影响 | 第62-63页 |
| 4.3.6 Westernblot检测RAW264.7分泌的细胞因子 | 第63-66页 |
| 4.4 本章小结 | 第66-68页 |
| 第五章 结论与展望 | 第68-70页 |
| 5.1 结论 | 第68页 |
| 5.2 展望 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 在校期间发表论文 | 第80页 |
