| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 主要英文缩略词索引 | 第13-15页 |
| 第1章 绪论 | 第15-22页 |
| 1.1 青稞苗研究概述 | 第15-16页 |
| 1.1.1 青稞苗营养成分 | 第15页 |
| 1.1.2 青稞苗加工生产现状及存在的问题 | 第15-16页 |
| 1.2 二十六烷醇研究现状 | 第16-17页 |
| 1.2.1 二十六烷醇简介 | 第16页 |
| 1.2.2 二十六烷醇功能特性 | 第16-17页 |
| 1.3 肝损伤 | 第17-19页 |
| 1.3.1 肝损伤概述 | 第17-18页 |
| 1.3.2 脂肪性肝损伤 | 第18-19页 |
| 1.4 早期肝损伤机制 | 第19-21页 |
| 1.4.1 氧化应激和脂质过氧化 | 第19-20页 |
| 1.4.2 线粒体功能损伤 | 第20页 |
| 1.4.3 炎症反应 | 第20-21页 |
| 1.5 研究意义和内容 | 第21-22页 |
| 1.5.1 研究意义 | 第21页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第21-22页 |
| 第2章 BS-Hex的提取优化及其抗油脂氧化性能测定 | 第22-33页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-27页 |
| 2.3.1 青稞苗二十六烷醇的提取工艺 | 第23页 |
| 2.3.2 气相色谱法检测 | 第23-25页 |
| 2.3.3 单因素试验优化提取工艺 | 第25-26页 |
| 2.3.4 正交试验确定最佳工艺参数 | 第26页 |
| 2.3.5 抗油脂氧化试验 | 第26-27页 |
| 2.3.6 统计学分析 | 第27页 |
| 2.4 结果与分析 | 第27-32页 |
| 2.4.1 提取料液比对得率的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.2 提取时间对得率的影响 | 第28页 |
| 2.4.3 提取温度对得率的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.4 氢氧化钠质量浓度对得率的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.5 正交试验确定最佳工艺参数 | 第30-31页 |
| 2.4.6 最佳工艺参数验证及确定 | 第31页 |
| 2.4.7 POV测定结果 | 第31-32页 |
| 2.5 本章小结 | 第32-33页 |
| 第3章 PA诱导HepG2细胞脂质过氧化损伤模型的建立 | 第33-45页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第33-35页 |
| 3.2.1 实验细胞 | 第33页 |
| 3.2.2 材料与试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.3 仪器与设备 | 第34-35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-40页 |
| 3.3.1 主要溶液及药物的配制 | 第35页 |
| 3.3.2 HepG2细胞的培养和处理 | 第35-37页 |
| 3.3.3 细胞存活率的测定 | 第37页 |
| 3.3.4 细胞蛋白的测定 | 第37-38页 |
| 3.3.5 活性氧(ROS)的荧光测定 | 第38-39页 |
| 3.3.6 油红O染色 | 第39页 |
| 3.3.7 甘油三酯(TG)的测定 | 第39页 |
| 3.3.8 丙二醛(MDA)的测定 | 第39-40页 |
| 3.3.9 统计学分析 | 第40页 |
| 3.4 结果与分析 | 第40-43页 |
| 3.4.1 PA浓度对细胞存活率的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.2 PA诱导时间的确定 | 第41页 |
| 3.4.3 不同PA浓度对细胞内ROS水平的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.4 不同PA浓度对细胞内脂质沉积的影响 | 第42页 |
| 3.4.5 不同PA浓度对细胞内TG和MDA含量的影响 | 第42-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 第4章 BS-Hex对HepG2细胞脂质过氧化损伤功效研究 | 第45-56页 |
| 4.1 引言 | 第45页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第45-46页 |
| 4.2.1 实验细胞 | 第45页 |
| 4.2.2 材料与试剂 | 第45-46页 |
| 4.2.3 仪器与设备 | 第46页 |
| 4.3 实验方法 | 第46-49页 |
| 4.3.1 主要溶液及药物的配制 | 第46-47页 |
| 4.3.2 HepG2细胞的培养和处理 | 第47页 |
| 4.3.3 MTT法测定细胞存活率 | 第47页 |
| 4.3.4 细胞蛋白的测定 | 第47页 |
| 4.3.5 BS-Hex剂量的设计 | 第47页 |
| 4.3.6 油红O染色 | 第47页 |
| 4.3.7 活性氧(ROS)的定量测定 | 第47页 |
| 4.3.8 SOD酶活力的测定 | 第47-48页 |
| 4.3.9 GSH-px酶活力的测定 | 第48页 |
| 4.3.10 ALT和AST的测定 | 第48-49页 |
| 4.3.11 TNF-α、IL-1β、IL-6的测定 | 第49页 |
| 4.3.12 统计学分析 | 第49页 |
| 4.4 结果与分析 | 第49-53页 |
| 4.4.1 BS-Hex浓度对细胞存活率的影响 | 第49-50页 |
| 4.4.2 BS-Hex对损伤细胞脂质沉积的影响 | 第50页 |
| 4.4.3 BS-Hex对损伤细胞氧化应激指标的影响 | 第50-51页 |
| 4.4.4 BS-Hex对损伤细胞ALT、AST活力的影响 | 第51-52页 |
| 4.4.5 BS-Hex对损伤细胞TNF-α、 IL-1β、IL-6的影响 | 第52-53页 |
| 4.5 本章小结 | 第53-56页 |
| 第5章 BS-Hex对小鼠急性酒精肝损伤保护作用研究 | 第56-69页 |
| 5.1 引言 | 第56页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第56-57页 |
| 5.2.1 实验动物 | 第56页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第56-57页 |
| 5.2.3 仪器与设备 | 第57页 |
| 5.3 实验方法 | 第57-61页 |
| 5.3.1 药物的配制 | 第57页 |
| 5.3.2 动物分组及给药 | 第57-58页 |
| 5.3.3 实验动物处理及样本采集 | 第58页 |
| 5.3.4 小鼠灌胃操作 | 第58-59页 |
| 5.3.5 血糖值的测定 | 第59页 |
| 5.3.6 摘眼球取血及分离血清 | 第59页 |
| 5.3.7 胃黏膜的处理 | 第59页 |
| 5.3.8 肝组织的处理 | 第59页 |
| 5.3.9 相关检测指标及方法 | 第59-61页 |
| 5.3.10 统计学分析 | 第61页 |
| 5.4 结果与分析 | 第61-67页 |
| 5.4.1 小鼠醉酒后行为学表现和胃黏膜形态观察 | 第61-62页 |
| 5.4.2 BS-Hex对小鼠醉酒率的影响 | 第62-63页 |
| 5.4.3 BS-Hex对急性酒精中毒小鼠血糖的影响 | 第63页 |
| 5.4.4 BS-Hex对小鼠肝重量系数的影响 | 第63-64页 |
| 5.4.5 BS-Hex对小鼠急性酒精肝损伤的病理学影响 | 第64-66页 |
| 5.4.6 BS-Hex对小鼠急性酒精肝损伤生化指标的影响 | 第66-67页 |
| 5.5 本章小结 | 第67-69页 |
| 第6章 结论与展望 | 第69-71页 |
| 6.1 结论 | 第69-70页 |
| 6.2 展望 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 附录 | 第81页 |
