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嘌呤核苷磷酸化酶合成利巴韦林的应用研究

摘要第5-6页
Abstract第6页
第1章 文献综述第10-21页
    1.1 利巴韦林概述第10-16页
        1.1.1 利巴韦林基本性质第10页
        1.1.2 利巴韦林的作用机制第10-11页
        1.1.3 利巴韦林的应用第11-12页
        1.1.4 合成利巴韦林的方法研究进展第12-16页
    1.2 嘌呤核苷磷酸化酶概述第16-19页
        1.2.1 嘌呤核苷磷酸化酶的定义与作用第16-17页
        1.2.2 嘌呤核苷磷酸化酶的来源和分类第17-18页
        1.2.3 嘌呤核苷磷酸化酶的研究现状第18-19页
    1.3 课题的立题背景及主要内容第19-21页
        1.3.1 立题背景第19页
        1.3.2 主要研究内容第19-21页
第2章 材料和方法第21-31页
    2.1 实验材料第21-24页
        2.1.1 实验菌种及质粒第21页
        2.1.2 培养基配方第21页
        2.1.3 实验材料与试剂第21-22页
        2.1.4 实验仪器第22-23页
        2.1.5 实验溶液配置第23-24页
    2.2 实验方法第24-31页
        2.2.1 培养方法第24-25页
        2.2.2 浓度测定第25页
        2.2.3 目的基因合成第25页
        2.2.4 表达载体的构建与鉴定第25页
        2.2.5 大肠杆菌感受态制备及转化第25-26页
        2.2.6 目的蛋白的诱导表达及条件优化第26页
        2.2.7 目的蛋白的分离与纯化第26页
        2.2.8 蛋白质浓度测定第26-27页
        2.2.9 SDS-PAGE第27-28页
        2.2.10 质粒稳定性第28页
        2.2.11 酶法合成利巴韦林的测定方法第28-29页
        2.2.12 酶活测定第29-31页
第3章 乙酰短杆菌培养条件的优化第31-42页
    3.1 前言第31页
    3.2 乙酰短杆菌预培养第31-35页
        3.2.1 种子生长曲线第31-32页
        3.2.2 乙酰短杆菌酶法合成利巴韦林第32-33页
        3.2.3 多种培养基方案对比第33-34页
        3.2.4 不同蛋白胨对比第34-35页
    3.3 Plackett-Burman (PB)法优化培养基第35-37页
    3.4 响应面法优化培养基第37-41页
        3.4.1 Box-Behnken (BBD)结果第37-40页
        3.4.2 摇瓶验证结果第40-41页
    3.5 本章小结第41-42页
第4章 重组菌的构建表达及蛋白纯化第42-52页
    4.1 前言第42页
    4.2 实验结果讨论第42-50页
        4.2.1 表达载体的构建第42-45页
        4.2.2 目的蛋白的诱导表达及条件优化第45-47页
        4.2.3 目的蛋白的分离与纯化第47-50页
        4.2.4 质粒稳定性结果分析第50页
    4.3 本章小结第50-52页
第5章 酶学性质研究第52-61页
    5.1 前言第52页
    5.2 实验结果与讨论第52-59页
        5.2.1 酶活测定第52-53页
        5.2.2 最适反应温度及最适反应pH第53-55页
        5.2.3 温度稳定性及pH稳定性第55-58页
        5.2.4 动力学参数第58-59页
    5.3 本章小结第59-61页
第6章 酶法合成利巴韦林工艺优化第61-68页
    6.1 前言第61页
    6.2 实验结果与分析第61-67页
        6.2.1 酶反应过程曲线第61-63页
        6.2.2 诱导及非诱导蛋白酶反应对比第63页
        6.2.3 菌体添加量优化第63-65页
        6.2.4 底物浓度优化第65-67页
    6.3 本章小结第67-68页
第7章 结论与展望第68-70页
    7.1 结论第68-69页
    7.2 展望第69-70页
参考文献第70-77页
致谢第77-78页
发表专利第78页

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