| 中文摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第14-19页 |
| 1 金线莲产业化现状 | 第14-16页 |
| 2 金线莲中萘乙酸、吲哚丁酸等激素残留检测研究现状 | 第16页 |
| 3 金线莲多糖成分提取技术研究现状 | 第16-17页 |
| 4 金线莲总黄酮功效成分提取技术研究现状 | 第17页 |
| 5 本项目研究的目的与意义 | 第17-19页 |
| 第二章 金线莲生长期内激素(IBA、NAA)残留检测方法以及动态变化的研究 | 第19-34页 |
| 1 前言 | 第19页 |
| 2 材料与设备 | 第19页 |
| 2.1 材料 | 第19页 |
| 2.2 仪器及设备 | 第19页 |
| 2.3 购买试剂 | 第19页 |
| 3 实验方法 | 第19-21页 |
| 3.1 色谱条件 | 第19-20页 |
| 3.2 标准溶液的配制 | 第20页 |
| 3.3 所需试剂的配制 | 第20页 |
| 3.4 样品的处理 | 第20页 |
| 3.5 结果计算 | 第20-21页 |
| 4 结果与分析 | 第21-32页 |
| 4.1 金线莲中吲哚丁酸(IBA)激素残留检测方法的优化 | 第21-26页 |
| 4.1.1 金线莲中吲哚丁酸的提取分离与纯化 | 第21页 |
| 4.1.2 色谱条件的选择 | 第21-24页 |
| 4.1.3 分析方法的线性关系测定 | 第24-25页 |
| 4.1.4 精密度实验 | 第25页 |
| 4.1.5 加标回收率实验 | 第25-26页 |
| 4.1.6 样品中吲哚丁酸残留量的测定 | 第26页 |
| 4.2 金线莲中萘乙酸(NAA)激素残留检测方法的优化 | 第26-31页 |
| 4.2.1 金线莲中萘乙酸提取分离与纯化 | 第26-27页 |
| 4.2.2 萘乙酸测定色谱条件的选择 | 第27-29页 |
| 4.2.3 分析方法的线性关系测定 | 第29-30页 |
| 4.2.4 精密度实验 | 第30页 |
| 4.2.5 加标回收率实验 | 第30-31页 |
| 4.2.6 样品中萘乙酸残留量的测定 | 第31页 |
| 4.3 金线莲生长期内(0-6个月)激素(IBA、NAA)的动态变化 | 第31-32页 |
| 4.3.1 金线莲生长期内(0-6个月)激素IBA动态变化 | 第31-32页 |
| 4.3.2 金线莲生长期内(0-6个月)激素NAA动态变化 | 第32页 |
| 5 小结 | 第32-34页 |
| 第三章 金线莲中多糖成分提取工艺以及生长期内动态变化的研究 | 第34-53页 |
| 1 前言 | 第34页 |
| 2 材料与设备 | 第34-35页 |
| 2.1 材料 | 第34页 |
| 2.2 仪器及设备 | 第34页 |
| 2.3 购买试剂 | 第34-35页 |
| 2.4 自制试剂 | 第35页 |
| 3 实验方法 | 第35-39页 |
| 3.1 水溶剂提取法提取金线莲中多糖工艺的研究 | 第35-36页 |
| 3.1.1 标准曲线的配制与绘制 | 第35页 |
| 3.1.2 金线莲样品的制备 | 第35页 |
| 3.1.3 提取及测定金线莲中多糖工艺流程 | 第35-36页 |
| 3.1.4 结果计算 | 第36页 |
| 3.1.5 最佳提取条件的确定 | 第36页 |
| 3.2 微波辅助提取法提取金线莲中多糖工艺的研究 | 第36-38页 |
| 3.2.1 标准曲线的配制与绘制 | 第36-37页 |
| 3.2.2 金线莲样品的制备 | 第37页 |
| 3.2.3 提取及测定金线莲中多糖工艺流程 | 第37页 |
| 3.2.4 结果计算 | 第37页 |
| 3.2.5 最佳提取条件的确定 | 第37-38页 |
| 3.3 超声波辅助提取法提取金线莲中多糖工艺的研究 | 第38-39页 |
| 3.3.1 标准曲线的配制与绘制 | 第38页 |
| 3.3.2 金线莲样品的制备 | 第38页 |
| 3.3.3 提取及测定金线莲中多糖工艺流程 | 第38页 |
| 3.3.4 结果计算 | 第38-39页 |
| 3.3.5 最佳提取条件的确定 | 第39页 |
| 3.4 金线莲生长期内(0-6个月)多糖含量的动态变化 | 第39页 |
| 4 结果与分析 | 第39-51页 |
| 4.1 水溶剂提取法提取金线莲中多糖工艺的研究 | 第39-43页 |
| 4.1.1 标准曲线的绘制 | 第39-40页 |
| 4.1.2 单因素实验条件的确定 | 第40-42页 |
| 4.1.3 正交实验确定金线莲多糖提取的最佳工艺 | 第42-43页 |
| 4.1.4 最佳工艺验证实验 | 第43页 |
| 4.2 微波辅助提取法提取金线莲中多糖工艺的研究 | 第43-46页 |
| 4.2.1 标准曲线的绘制 | 第43页 |
| 4.2.2 单因素实验条件的确定 | 第43-45页 |
| 4.2.3 正交实验确定金线莲多糖提取的最佳工艺 | 第45-46页 |
| 4.2.4 最佳工艺验证实验 | 第46页 |
| 4.3 超声波辅助法提取金线莲中多糖工艺的研究 | 第46-50页 |
| 4.3.1 标准曲线的绘制 | 第46-47页 |
| 4.3.2 单因素实验条件的确定 | 第47-49页 |
| 4.3.3 正交实验确定金线莲多糖提取的最佳工艺 | 第49-50页 |
| 4.3.4 最佳工艺验证实验 | 第50页 |
| 4.4 三种方法最佳工艺提取率对比 | 第50-51页 |
| 4.5 金线莲生长期内(0-6个月)多糖成分的动态变化 | 第51页 |
| 5 小结 | 第51-53页 |
| 第四章 金线莲中总黄酮功效成分提取工艺以及生长期内动态变化的研究 | 第53-74页 |
| 1 前言 | 第53页 |
| 2 材料与设备 | 第53页 |
| 2.1 材料 | 第53页 |
| 2.2 仪器及设备 | 第53页 |
| 2.3 购买试剂 | 第53页 |
| 3 实验方法 | 第53-58页 |
| 3.1 索式提取法提取金线莲中总黄酮工艺的研究 | 第53-55页 |
| 3.1.1 金线莲总黄酮的提取 | 第53页 |
| 3.1.2 标准溶液的配制和绘制 | 第53-54页 |
| 3.1.3 总黄酮的测定及计算方法 | 第54页 |
| 3.1.4 最佳提取条件的确定 | 第54-55页 |
| 3.2 超声波辅助法提取金线莲中总黄酮工艺的研究 | 第55-56页 |
| 3.2.1 金线莲总黄酮的提取 | 第55页 |
| 3.2.2 标准溶液的配制和绘制 | 第55页 |
| 3.2.3 总黄酮的测定及计算方法 | 第55页 |
| 3.2.4 最佳提取条件的确定 | 第55-56页 |
| 3.3 微波辅助提取法提取金线莲中总黄酮工艺的研究 | 第56-58页 |
| 3.3.1 金线莲总黄酮的提取 | 第56页 |
| 3.3.2 标准溶液的配制和绘制 | 第56-57页 |
| 3.3.3 总黄酮的测定及计算方法 | 第57页 |
| 3.3.4 最佳提取条件的确定 | 第57-58页 |
| 3.4 金线莲生长期内(0-6个月)总黄酮功效成分的动态变化 | 第58页 |
| 4 结果与分析 | 第58-73页 |
| 4.1 索式提取法提取金线莲中总黄酮工艺的研究 | 第58-62页 |
| 4.1.1 标准曲线的绘制 | 第58页 |
| 4.1.2 紫外光谱分析 | 第58-59页 |
| 4.1.3 单因素实验条件的确定 | 第59-61页 |
| 4.1.4 正交实验确定金线莲总黄酮提取的最佳工艺 | 第61页 |
| 4.1.5 最佳工艺验证实验 | 第61-62页 |
| 4.2 超声波辅助提取法提取金线莲中总黄酮工艺的研究 | 第62-67页 |
| 4.2.1 标准曲线的绘制 | 第62页 |
| 4.2.2 紫外光谱分析 | 第62页 |
| 4.2.3 单因素实验条件的确定 | 第62-65页 |
| 4.2.4 正交实验确定金线莲总黄酮提取的最佳工艺 | 第65-66页 |
| 4.2.5 最佳工艺验证实验 | 第66-67页 |
| 4.3 微波辅助提取法提取金线莲中总黄酮工艺的研究结果 | 第67-72页 |
| 4.3.1 标准曲线的绘制 | 第67页 |
| 4.3.2 紫外光谱分析 | 第67-68页 |
| 4.3.3 单因素实验条件的确定 | 第68-71页 |
| 4.3.4 正交实验确定最佳工艺 | 第71-72页 |
| 4.3.5 最佳工艺验证实验 | 第72页 |
| 4.4 三种方法最佳工艺提取率的对比 | 第72页 |
| 4.5 金线莲生长期内(0-6个月)总黄酮功效成分的动态变化 | 第72-73页 |
| 5 小结 | 第73-74页 |
| 第五章 结论与展望 | 第74-75页 |
| 1 结论 | 第74页 |
| 2 创新点 | 第74-75页 |
| 3 展望 | 第75页 |
| 资助基金 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
