摘要 | 第5-7页 |
abstract | 第7-8页 |
第一章 绪论 | 第12-29页 |
1.1 引言 | 第12-13页 |
1.2 Fe检测方法 | 第13-14页 |
1.2.1 电感耦合等离子体发射光谱法(ICP-AES) | 第13页 |
1.2.2 原子吸收分光光度法(AAS) | 第13-14页 |
1.2.3 紫外-可见分光光度法(UV) | 第14页 |
1.3 葡萄糖检测方法 | 第14-17页 |
1.3.1 传统检测方法 | 第14-16页 |
1.3.2 生物传感器法 | 第16-17页 |
1.3.3 血糖试纸法 | 第17页 |
1.4 碳材料概述 | 第17-21页 |
1.4.1 碳纳米管概述 | 第18-19页 |
1.4.2 碳纳米管在食品检测中的应用 | 第19-21页 |
1.5 天然酶和模拟酶简介 | 第21-27页 |
1.5.1 天然酶 | 第21-24页 |
1.5.2 过氧化物模拟酶 | 第24-27页 |
1.6 本文研究的主要目的和内容 | 第27-29页 |
第二章 基于碳纳米管-辣根过氧化物酶复合材料比色法检测Fe2+的研究 | 第29-43页 |
2.1 引言 | 第29-30页 |
2.2 实验部分 | 第30-34页 |
2.2.1 试剂与材料 | 第30页 |
2.2.2 仪器 | 第30-31页 |
2.2.3 实验方法 | 第31-34页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第34-42页 |
2.3.1 实验原理 | 第34-35页 |
2.3.2 CNT,HRP和CNT-HRP复合材料的表征 | 第35-36页 |
2.3.3 实验条件的优化 | 第36-39页 |
2.3.4 比色传感器检测Fe2+ | 第39-40页 |
2.3.5 比色传感器特异性检测Fe2+ | 第40-41页 |
2.3.6 实际样品(HSA)检测 | 第41-42页 |
2.4 结论 | 第42-43页 |
第三章 基于碳纳米管-双酶复合材料比色法检测葡萄糖 | 第43-61页 |
3.1 引言 | 第43-44页 |
3.2 实验部分 | 第44-49页 |
3.2.1 试剂与材料 | 第44-45页 |
3.2.2 仪器 | 第45页 |
3.2.3 实验方法 | 第45-49页 |
3.3 结果与讨论 | 第49-59页 |
3.3.1 实验原理 | 第49页 |
3.3.2 CNT,HRP,GOD和CNT-HRP-GOD复合材料的表征 | 第49-51页 |
3.3.3 验证CNT-HRP-GOD复合材料的优越性 | 第51-52页 |
3.3.4 实验条件考察 | 第52-55页 |
3.3.5 葡萄糖的检测 | 第55-56页 |
3.3.6 方法特异性分析 | 第56页 |
3.3.7 金属离子干扰性分析 | 第56-59页 |
3.3.8 血清中葡萄糖的检测 | 第59页 |
3.4 结论 | 第59-61页 |
第四章 基于ZnFe_2O_4/CNT-GOD复合材料比色法检测血糖 | 第61-80页 |
4.1 引言 | 第61-62页 |
4.2 实验部分 | 第62-67页 |
4.2.1 试剂与材料 | 第62页 |
4.2.2 仪器 | 第62-63页 |
4.2.3 实验方法 | 第63-67页 |
4.3 结果与讨论 | 第67-78页 |
4.3.1 实验原理 | 第67页 |
4.3.2 材料表征 | 第67-71页 |
4.3.3 实验条件优化 | 第71-73页 |
4.3.4 葡萄糖检测 | 第73-75页 |
4.3.5 葡萄糖特异性检测 | 第75-76页 |
4.3.6 金属离子干扰实验 | 第76-78页 |
4.3.7 实际样品检测 | 第78页 |
4.3.8 稳定性实验 | 第78页 |
4.4 结论 | 第78-80页 |
第五章 总结与展望 | 第80-83页 |
5.1 总结 | 第80-81页 |
5.2 展望 | 第81-83页 |
参考文献 | 第83-97页 |
致谢 | 第97-98页 |
攻读硕士期间取得的研究成绩 | 第98-99页 |