| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-19页 |
| 1.1 彩叶芋的生物学特性及观赏价值 | 第9-10页 |
| 1.2 离体诱变 | 第10-13页 |
| 1.2.1 概述 | 第10-11页 |
| 1.2.2 EMS诱导突变体的原理及应用 | 第11页 |
| 1.2.3 变异植株的鉴定 | 第11-13页 |
| 1.3 分子标记技术 | 第13-15页 |
| 1.3.1 分子标记技术原理及应用 | 第13-15页 |
| 1.3.2 分子标记技术在花叶芋属植物中的应用 | 第15页 |
| 1.4 低温胁迫下观赏植物的抗寒性研究 | 第15-19页 |
| 1.4.1 低温胁迫对植物外部形态的影响 | 第16页 |
| 1.4.2 低温胁迫对细胞膜系统的影响 | 第16-17页 |
| 1.4.3 低温胁迫对植物抗氧化系统的影响 | 第17-18页 |
| 1.4.4 低温胁迫对植物渗透物质的影响 | 第18-19页 |
| 第2章 引言 | 第19-21页 |
| 2.1 研究的目的及意义 | 第19-20页 |
| 2.2 研究的技术路线 | 第20-21页 |
| 第3章 诱变材料的表型观察及抗寒性初步调查 | 第21-27页 |
| 3.1 试验材料 | 第21页 |
| 3.2 试验方法 | 第21页 |
| 3.2.1 M0代第一生长周期表型观察 | 第21页 |
| 3.2.2 M0代第二生长周期表型观察 | 第21页 |
| 3.2.3 M0代第一生长周期表型变异株的抗寒性调查 | 第21页 |
| 3.3 结果与分析 | 第21-25页 |
| 3.3.1 表型变异株的筛选 | 第21-24页 |
| 3.3.2 M0代第一生长周期表型变异株的抗寒调查 | 第24-25页 |
| 3.4 讨论 | 第25-27页 |
| 第4章 表型变异株SCoT分子标记鉴定 | 第27-43页 |
| 4.1 试验材料 | 第27页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第27页 |
| 4.1.2 主要试剂与仪器 | 第27页 |
| 4.2 试验方法 | 第27-31页 |
| 4.2.1 彩叶芋DNA的提取 | 第27-28页 |
| 4.2.2 单因子实验 | 第28页 |
| 4.2.3 SCoT-PCR反应因素的正交设计 | 第28-29页 |
| 4.2.4 退火温度及循环次数的确定 | 第29页 |
| 4.2.5 反应体系稳定性验证 | 第29-30页 |
| 4.2.6 彩叶芋变异株SCoT分子标记及聚类分析 | 第30-31页 |
| 4.3 试验结果与分析 | 第31-41页 |
| 4.3.1 改良CTAB法对彩叶芋DNA提取效果分析 | 第31页 |
| 4.3.2 彩叶芋SCoT-PCR优化体系分析 | 第31-38页 |
| 4.3.3 变异株的多态性分析 | 第38-39页 |
| 4.3.4 10份彩叶芋材料SCoT扩增多态性及聚类分析 | 第39-41页 |
| 4.4 讨论 | 第41-43页 |
| 第5章 变异株的抗寒性分析 | 第43-55页 |
| 5.1 试验材料 | 第43页 |
| 5.2 试验方法 | 第43-46页 |
| 5.2.1 试验设计 | 第43页 |
| 5.2.2 相关生理指标测定 | 第43-46页 |
| 5.2.3 数据处理 | 第46页 |
| 5.3 结果与分析 | 第46-53页 |
| 5.3.1 低温胁迫下彩叶芋叶片形态的变化 | 第46-47页 |
| 5.3.2 低温胁迫对彩叶芋相对电导率的影响 | 第47-48页 |
| 5.3.3 低温胁迫对彩叶芋SOD活性的影响 | 第48-49页 |
| 5.3.4 低温胁迫对彩叶芋POD活性的影响 | 第49-50页 |
| 5.3.5 低温胁迫对彩叶芋丙二醛含量的影响 | 第50-52页 |
| 5.3.6 低温胁迫对彩叶芋脯氨酸含量的影响 | 第52-53页 |
| 5.4 讨论 | 第53-55页 |
| 第6章 总结 | 第55-57页 |
| 6.1 结论 | 第55-56页 |
| 6.2 下一步计划 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第65-67页 |
| 缩略词 | 第67-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 附图 | 第71-72页 |
