中文摘要 | 第6-7页 |
英文摘要 | 第7页 |
缩略语表 | 第8-9页 |
1 前言 | 第9-13页 |
2 材料与方法 | 第13-31页 |
2.1 材料 | 第13-16页 |
2.1.1 实验动物 | 第13页 |
2.1.2 实验试剂 | 第13-15页 |
2.1.3 主要仪器 | 第15-16页 |
2.2 方法 | 第16-27页 |
2.2.1 配制试剂 | 第16-18页 |
2.2.2 建立小鼠和细胞缺氧模型 | 第18-20页 |
2.2.3 水迷宫小鼠学习记忆能力测定 | 第20-21页 |
2.2.4 提取RNA | 第21页 |
2.2.5 提取DNA | 第21-22页 |
2.2.6 甲基化DNA | 第22页 |
2.2.7 Real-timePCR | 第22-24页 |
2.2.8 分子克隆实验 | 第24-26页 |
2.2.9 抽提小鼠皮层组织蛋白 | 第26-27页 |
2.3 蛋白含量测定 | 第27-31页 |
2.3.1 蛋白印记(Western blot) | 第28-31页 |
3 实验结果与分析 | 第31-43页 |
3.1 水迷宫实验结果 | 第31-33页 |
3.1.1 重复低氧实验对小鼠低氧耐受性的影响 | 第31-32页 |
3.1.2 小鼠大脑立体注射5-Aza-cdR后水迷宫测试结果 | 第32-33页 |
3.2 Real-time结果 | 第33-38页 |
3.2.1 5-Aza-cdR处理过的小鼠海马中DNMTs和Reelin mRNA表达影响 | 第33-34页 |
3.2.2 低氧对小鼠海马中DNMT1、DNMT3A和Reelin mRNA表达影响 | 第34-36页 |
3.2.3 低氧对神经细胞NG108内DNMTs和Reelin mRNA表达影响 | 第36-38页 |
3.3 Westernblot结果 | 第38-39页 |
3.4 克隆鉴定及结果 | 第39-43页 |
3.4.1 小鼠Reelin基因启动子克隆及鉴定 | 第39-41页 |
3.4.2 低氧预适应对小鼠和细胞Reelin启动子区甲基化影响 | 第41-43页 |
4 讨论 | 第43-46页 |
5 结论 | 第46-48页 |
参考文献 | 第48-53页 |
综述 | 第53-58页 |
参考文献 | 第56-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
作者简介 | 第59页 |