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黄瓜根际两种自毒物降解菌的分离鉴定及特性的研究

中文摘要第9-11页
ABSTRACT第11-12页
1 前言第13-27页
    1.1 黄瓜连作障碍第13-19页
        1.1.1 黄瓜连作障碍产生的原因第14-15页
            1.1.1.1 土壤有害微生物增加第14页
            1.1.1.2 土壤次生酸化及盐渍化第14页
            1.1.1.3 植物自毒作用第14-15页
        1.1.2 解决黄瓜连作障碍的方法第15-19页
            1.1.2.1 合理轮作、间作、进行嫁接第15-16页
            1.1.2.2 合理施肥第16页
            1.1.2.3 土壤消毒灭菌第16-17页
            1.1.2.4 抗性品种的应用第17页
            1.1.2.5 有机改良剂第17-18页
            1.1.2.6 生物防治第18页
            1.1.2.7 盆栽法和无土栽培法第18-19页
    1.2 植物化感作用的研究第19-24页
        1.2.1 根系分泌物第19-20页
        1.2.2 化感物质间的相互作用第20页
        1.2.3 化感物质的释放途径第20-22页
            1.2.3.1 雨雾直接从植物表面淋溶第21页
            1.2.3.2 植物向体外释放挥发物质第21页
            1.2.3.3 植物根系分泌和残根的分解第21页
            1.2.3.4 植株残株或凋落物分解第21-22页
        1.2.4 化感作用机理第22-24页
            1.2.4.1 影响细胞膜透性,抑制植物对养分的吸收第22页
            1.2.4.2 影响细胞分裂、伸长和根尖的细微结构第22页
            1.2.4.3 影响K、Ca、P等矿质离子和水分的吸收第22-23页
            1.2.4.4 影响植物的呼吸作用第23页
            1.2.4.5 影响植物的光合作用第23页
            1.2.4.6 影响蛋白质合成和基因表达第23页
            1.2.4.7 影响酶功能和活性第23-24页
            1.2.4.8 对植物激素的影响第24页
    1.3 对羟基苯甲酸的作用机理第24-25页
        1.3.1 酚酸类物质对植物的直接毒害作用第24页
        1.3.2 酚酸类物质对植物的间接毒害作用第24-25页
    1.4 对羟基苯甲酸和阿魏酸降解菌研究进展第25页
    1.5 本研究的目的意义第25-27页
2 材料与方法第27-34页
    2.1 实验材料第27-28页
        2.1.1 培养基第27-28页
            2.1.1.1 初筛固体选择性培养基第27页
            2.1.1.2 LB培养基第27页
            2.1.1.3 葡萄糖蛋白胨水培养基第27页
            2.1.1.4 发酵种子培养基第27页
            2.1.1.5 发酵培养基第27页
            2.1.1.6 牛肉膏蛋白胨培养基第27页
            2.1.1.7 蛋白胨水培养基第27页
            2.1.1.8 明胶液化培养基第27-28页
            2.1.1.9 淀粉水解培养基第28页
            2.1.1.10 V-P试验和甲基红试验培养基第28页
            2.1.1.11 糖、醇发酵培养基第28页
        2.1.2 幼苗准备第28页
    2.2 实验方法第28-34页
        2.2.1 土壤样品的制备第28页
        2.2.2 高效PHBA和FA降解菌的筛选第28-29页
            2.2.2.1 降解菌的初筛第28-29页
            2.2.2.2 降解菌的复筛第29页
        2.2.3 细菌的生理生化和分子鉴定第29-30页
            2.2.3.1 生理生化指标测定第29页
            2.2.3.2 分子鉴定第29-30页
        2.2.4 降解菌的降解能力和代谢产物的检测第30-31页
            2.2.4.1 样品处理第30页
            2.2.4.2 萃取和高效液相色谱第30-31页
        2.2.5 PHBA降解菌生长条件的优化第31页
            2.2.5.1 单因素试验第31页
            2.2.5.2 Box-Behnken中心组合设计第31页
        2.2.6 FA降解菌生长条件优化第31页
        2.2.7 抗氧化物酶的提取第31页
        2.2.8 抗氧化酶活性测定第31-32页
            2.2.8.1 超氧化物歧化酶活性测定第31-32页
            2.2.8.2 过氧化氢酶活性测定第32页
            2.2.8.3 愈创木酚过氧化物酶活性测定第32页
            2.2.8.4 谷胱甘肽还原酶活性测定第32页
            2.2.8.5 抗坏血酸过氧化物酶活性测定第32页
            2.2.8.6 脱氢抗坏血酸还原酶活性测定第32页
            2.2.8.7 单脱氢抗坏血酸还原酶(MDHAR)活性的测定第32页
        2.2.9 蛋白质含量的测定第32页
        2.2.10 叶片抗氧化酶相关指标的测定第32页
            2.2.10.1 丙二醛含量测定第32页
            2.2.10.2 超氧阴离子自由基02产生速率第32页
            2.2.10.3 H_2O_2含量测定第32页
        2.2.11 土壤酶活性的测定第32页
        2.2.12 抗氧化酶及其相关指标的统计分析第32-34页
3 结果分析第34-57页
    3.1 菌株筛选结果第34-35页
        3.1.1 初筛结果第34页
        3.1.2 复筛结果第34-35页
    3.2 细菌对PHBA、FA的降解趋势图第35-36页
    3.3 细菌的鉴定第36-39页
        3.3.1 生理生化鉴定结果第36-37页
        3.3.2 分子鉴定第37-39页
    3.4 HPLC检测代谢产物第39-41页
    3.5 发酵条件优化第41-46页
        3.5.1 单因素实验第41-44页
            3.5.1.1 PHBA单因素实验第41-42页
            3.5.1.2 FA单因素实验第42-44页
        3.5.2 响应面分析试验第44-46页
    3.6 CSY-P1在无机营养液中降解PHBA第46-47页
    3.7 菌体内酶活的变化第47-49页
        3.7.1 PHBA处理的菌体内酶活变化第47-48页
        3.7.2 FA处理的菌体内酶活变化第48-49页
    3.8 营养液发酵第49-50页
    3.9 土壤中PHBA、FA降解实验第50-51页
    3.10 盆栽实验第51-57页
        3.10.1 叶片抗氧化酶活性第51-53页
            3.10.1.1 PHBA处理的叶片抗氧化酶活性第51-52页
            3.10.1.2 FA处理的叶片抗氧化酶活性第52-53页
        3.10.2 黄瓜叶片抗氧化酶相关指标第53-54页
            3.10.2.1 PHBA处理的叶片抗氧化酶相关指标第53页
            3.10.2.2 FA处理的叶片抗氧化酶相关指标第53-54页
        3.10.3 土壤酶活性第54-57页
            3.10.3.1 PHBA处理的土壤酶活性第54-55页
            3.10.3.2 FA处理的土壤酶活性第55-57页
4 讨论第57-61页
5 结论第61-62页
参考文献第62-69页
致谢第69-70页
攻读学位期间发表论文情况第70页

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