| 学位论文数据集 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-50页 |
| 1.1 国内外生物多糖的研究状况 | 第18-31页 |
| 1.1.1 多糖的分离纯化 | 第19-23页 |
| 1.1.2 多糖的分子量测定 | 第23-24页 |
| 1.1.3 多糖的结构研究 | 第24-26页 |
| 1.1.4 壳聚糖的研究概况 | 第26-29页 |
| 1.1.5 真菌细胞壁多糖 | 第29-31页 |
| 1.2 麦角固醇的性质与分离提取 | 第31-36页 |
| 1.2.1 麦角固醇的来源 | 第32-33页 |
| 1.2.1.1 发酵法生产麦角固醇 | 第32-33页 |
| 1.2.1.2 从工业废菌体中提取麦角固醇 | 第33页 |
| 1.2.2 麦角固醇的分离纯化 | 第33-34页 |
| 1.2.2.1 细胞的破碎及皂化 | 第33-34页 |
| 1.2.2.2 麦角固醇的萃取 | 第34页 |
| 1.2.3 麦角固醇含量的测定 | 第34-36页 |
| 1.2.3.1 吸光度测定法 | 第35页 |
| 1.2.3.2 高压液相色谱法 | 第35-36页 |
| 1.3. 真菌菌丝体的利用 | 第36-38页 |
| 1.3.1 将废菌丝体转化为饲料 | 第36页 |
| 1.3.2 制备医用生物材料 | 第36页 |
| 1.3.3. 利用废菌丝体制备生物吸附剂 | 第36-37页 |
| 1.3.4. 从废菌丝体中提取壳聚糖与麦角固醇及葡聚糖 | 第37-38页 |
| 1.4 本文的研究路线 | 第38-40页 |
| 参考文献 | 第40-50页 |
| 第二章 (1→3)-A-D葡聚糖的结构研究与提取 | 第50-66页 |
| 2.1 材料与方法 | 第50-54页 |
| 2.1.1 实验设备及材料 | 第51页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 2.1.2.1 碱溶性多糖组分的结构研究方法 | 第51-53页 |
| 2.1.2.2 (1→3)-α-D 葡聚糖的分离纯化研究方法 | 第53-54页 |
| 2.2 结果和讨论 | 第54-62页 |
| 2.2.1 碱溶性多糖组分的结构 | 第54-60页 |
| 2.2.1.1 单糖组成 | 第54-55页 |
| 2.2.1.2 甲基化分析 | 第55页 |
| 2.2.1.3 红外表征 | 第55-56页 |
| 2.2.1.4 分子量测定 | 第56页 |
| 2.2.1.5 NMR解析 | 第56-60页 |
| 2.2.2 (1→3)-α-D葡聚糖的分离纯化结果 | 第60-62页 |
| 2.2.2.1 单因素影响实验的结果和讨论 | 第60-62页 |
| 2.3 小结 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-66页 |
| 第三章 麦角固醇的分离纯化及壳聚糖的提取 | 第66-92页 |
| 3.1 材料和方法 | 第67-74页 |
| 3.1.1 实验设备及材料 | 第67-68页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第68-74页 |
| 3.1.2.1 麦角固醇测定方法 | 第68-70页 |
| 3.1.2.2 单因素法对麦角固醇提取条件的优化 | 第70页 |
| 3.1.2.3 萃取条件的研究试验 | 第70-71页 |
| 3.1.2.4 麦角固醇的结晶 | 第71页 |
| 3.1.2.5 壳聚糖壳聚糖提取条件试验 | 第71-72页 |
| 3.1.2.6 壳聚糖的表征 | 第72-74页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第74-89页 |
| 3.2.1 麦角固醇的提取试验结果 | 第74-83页 |
| 3.2.1.1 麦角固醇含量的测定 | 第74-77页 |
| 3.2.1.2 单因素法对麦角固醇提取条件的优化 | 第77-80页 |
| 3.2.1.3 萃取条件试验结果 | 第80-82页 |
| 3.2.1.4 结晶麦角固醇的鉴定及纯度分析 | 第82-83页 |
| 3.2.2 壳聚糖提取的实验结果 | 第83-89页 |
| 3.2.2.1 壳聚糖提取条件优化 | 第83-86页 |
| 3.2.2.2 壳聚糖样品的分析测试结果 | 第86-89页 |
| 3.3 小结 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-92页 |
| 第四章 麦角固醇、葡聚糖、壳聚糖的联合提取 | 第92-122页 |
| 4.1 材料和方法 | 第93-101页 |
| 4.1.1 材料 | 第93-94页 |
| 4.1.2. 实验室试验方法 | 第94-97页 |
| 4.1.2.1 菌丝体的处理 | 第94页 |
| 4.1.2.2 麦角固醇的提取 | 第94页 |
| 4.1.2.3 葡聚糖(1→3)-α-D-glucan的提取 | 第94页 |
| 4.1.2.4 壳聚糖的提取 | 第94-95页 |
| 4.1.2.5 产品分析 | 第95页 |
| 4.1.2.6 对(1→3)-α-D葡聚糖和壳聚糖结构的红外表征 | 第95页 |
| 4.1.2.7 神经网络设计试验安排 | 第95-97页 |
| 4.1.3 初步放大试验设计 | 第97-98页 |
| 4.1.3.1 工艺流程 | 第97-98页 |
| 4.1.3.2 试验步骤 | 第98页 |
| 4.1.4 废水处理试验 | 第98-101页 |
| 4.1.4.1 厌氧发酵产甲烷初步试验 | 第98-100页 |
| 4.1.4.2 粘红酵母培养优化试验 | 第100-101页 |
| 4.2. 结果和讨论 | 第101-119页 |
| 4.2.1 提取结果 | 第101-103页 |
| 4.2.2 神经网络算法试验设计运算结果 | 第103-114页 |
| 4.2.2.1 训练过程及误差 | 第103-111页 |
| 4.2.2.2 神经网络模拟及验证结果 | 第111-114页 |
| 4.2.3 初步放大试验结果 | 第114-115页 |
| 4.2.4 废水处理实验结果 | 第115-119页 |
| 4.2.4.1 利用废水产甲烷试验结果 | 第115-117页 |
| 4.2.4.2 废水培养粘红酵母初步结果 | 第117-119页 |
| 4.3 小结 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-122页 |
| 第五章 葡聚糖的应用研究 | 第122-144页 |
| 5.1. 材料和方法 | 第124-128页 |
| 5.1.1 试剂和器材 | 第124页 |
| 5.1.2 试验方法 | 第124-128页 |
| 5.1.2.1 葡聚糖固定化脂肪酶的研究 | 第124-126页 |
| 5.1.2.2 葡聚糖季胺盐的制备及抗菌活性的研究方法 | 第126-128页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第128-138页 |
| 5.2.1 葡聚糖固定化脂肪酶的结果 | 第128-134页 |
| 5.2.1.1 脂肪酶的共价结合固定化 | 第128页 |
| 5.2.1.2 红外分析 | 第128-129页 |
| 5.2.1.3 脂肪酶的固定化效率和酶活 | 第129-132页 |
| 5.2.1.4 热稳定性、储藏稳定性和重复使用性 | 第132-134页 |
| 5.2.2. 葡聚糖季胺盐制备及抗菌活性研究结果与讨论 | 第134-138页 |
| 5.2.2.1 元素分析结果 | 第134-135页 |
| 5.2.2.2 红外谱图分析 | 第135-136页 |
| 5.2.2.3 ~1H NMR 解析 | 第136页 |
| 5.2.2.4 最低抑菌浓度及抑菌活性 | 第136-138页 |
| 5.2.2.5 细胞质释放监测结果 | 第138页 |
| 5.3 小结 | 第138-139页 |
| 参考文献 | 第139-144页 |
| 第六章 壳低聚糖在农业抗病害方面的应用研究 | 第144-160页 |
| 6.1. 材料和方法 | 第146-148页 |
| 6.1.1 试剂 | 第146页 |
| 6.1.2 实验方法 | 第146-148页 |
| 6.1.2.1 抗西瓜枯萎病实验试验设计和安排 | 第146-147页 |
| 6.1.2.2 壳低聚糖对棉花苗期生长的影响和对棉花枯萎病防治作用 | 第147-148页 |
| 6.2 实验结果与讨论 | 第148-157页 |
| 6.2.1 壳低聚糖抗西瓜枯萎病实验试验结果 | 第148-156页 |
| 6.2.1.1 西北农林科技大学植保学院试验结果 | 第148-149页 |
| 6.2.1.2 内蒙古农科院植保所实验结果 | 第149-151页 |
| 6.2.1.3 山东省农业科学院植物保护研究所试验结果 | 第151-154页 |
| 6.2.1.4 河北农科院植保所试验结果 | 第154页 |
| 6.2.1.5 时间及地域效果比较 | 第154-156页 |
| 6.2.2 壳低聚糖对棉花枯萎病防治的室内试验结果 | 第156-157页 |
| 6.3 小结 | 第157页 |
| 参考文献 | 第157-160页 |
| 第七章 结论、问题与建议 | 第160-164页 |
| 符号说明 | 第164-166页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第166-168页 |
| 致谢 | 第168-169页 |
| 附件 | 第169-170页 |
