中文摘要 | 第9-13页 |
英文摘要 | 第13-17页 |
符号及缩略语 | 第18-19页 |
第一篇 文献综述 | 第19-41页 |
第一章 miRNA在IFN介导的抗IBDV天然免疫中的研究进展 | 第19-27页 |
1. 干扰素在抗IBDV天然免疫中的作用 | 第19-21页 |
2. miRNA在调控干扰素抵御病毒感染中的作用 | 第21-23页 |
主要参考文献 | 第23-27页 |
第二章 miRNA在p53介导的抗IBDV天然免疫中的研究进展 | 第27-32页 |
1. p53在抗IBDV天然免疫中的作用 | 第27-28页 |
2. miRNA在调控p53中的研究进展 | 第28-29页 |
主要参考文献 | 第29-32页 |
第三章 miRNA在PRRs介导的抗IBDV天然免疫中的研究进展 | 第32-41页 |
1. PRRs在抗IBDV天然免疫中的作用 | 第32-35页 |
2. miRNA在PRRs识别病原中的作用 | 第35-37页 |
主要参考文献 | 第37-41页 |
第二篇 试验研究 | 第41-119页 |
第四章 传染性法氏囊病病毒对鸡法氏囊组织中干扰素和p53转录的影响 | 第41-54页 |
1. 材料与方法 | 第43-45页 |
1.1 主要实验材料 | 第43页 |
1.2 实验设计 | 第43页 |
1.3 IBDV感染SPF鸡后法氏囊组织的病理变化 | 第43页 |
1.4 IBDV感染SPF鸡后法氏囊组织IBDV载量检测 | 第43-44页 |
1.5 IBDV感染SPF鸡后法氏囊组织IFN和p53转录水平检测 | 第44-45页 |
2. 结果 | 第45-48页 |
2.1 IBDV感染SPF鸡后法氏囊组织的病理变化 | 第45页 |
2.2 IBDV感染SPF鸡后法氏囊组织IBDV载量的动态变化 | 第45-46页 |
2.3 IBDV感染SPF鸡后法氏囊组织IFN转录水平的动态变化 | 第46-48页 |
2.4 IBDV感染SPF鸡后法氏囊组织p53转录水平的动态变化 | 第48页 |
3. 讨论 | 第48-50页 |
参考文献 | 第50-54页 |
第五章 鸡p53抑制传染性法氏囊病病毒复制及gga-miR-2127对其调控的分子机制 | 第54-72页 |
1. 材料与方法 | 第55-59页 |
1.1 主要实验材料 | 第55-56页 |
1.2 IBDV感染对p53活性的影响 | 第56页 |
1.3 p53过表达对IBDV复制及抗病毒天然免疫基因表达的影响 | 第56-57页 |
1.4 p53抑制表达对IBDV复制及抗病毒天然免疫基因表达的影响 | 第57页 |
1.5 生物信息学预测调控p53的miRNA | 第57页 |
1.6 双荧光素酶报告系统分析gga-miR-2127对p53 3'UTR的调控作用 | 第57-58页 |
1.7 western blot分析gga-miR-2127对p53蛋白表达的影响 | 第58页 |
1.8 定量PCR分析gga-miR-2127对p53 mRNA转录的影响 | 第58页 |
1.9 双荧光素酶报告系统分析gga-miR-2127对p53活性的影响 | 第58页 |
1.10 分析gga-miR-2127过表达对IBDV滴度及天然免疫抗病毒基因表达的影响 | 第58-59页 |
2. 结果 | 第59-65页 |
2.1 IBDV感染对p53活性的影响 | 第59-60页 |
2.2 p53过表达对IBDV复制及抗病毒天然免疫基因表达的影响 | 第60-61页 |
2.3 p53抑制表达对IBDV复制及抗病毒天然免疫基因表达的影响 | 第61-62页 |
2.4 生物信息学预测调控p53的miRNA | 第62-63页 |
2.5 分析gga-miR-2127对p53的调控作用 | 第63-64页 |
2.6 双荧光素酶报告系统分析gga-miR-2127对p53活性的影响 | 第64页 |
2.7 分析gga-miR-2127过表达对IBDV滴度及天然免疫抗病毒基因表达的影响 | 第64-65页 |
3. 讨论 | 第65-67页 |
参考文献 | 第67-72页 |
第六章 gga-miR-9*靶向IRF2促进传染性法氏囊病病毒复制的机制 | 第72-86页 |
1. 材料与方法 | 第73-76页 |
1.1 主要实验材料 | 第73页 |
1.2 gga-miR-9*对IBDV复制的影响 | 第73-74页 |
1.3 gga-miR-9*调控IBDV复制的分子机制 | 第74-76页 |
2. 结果 | 第76-81页 |
2.1 gga-miR-9*对IBDV复制的影响 | 第76-77页 |
2.2 gga-miR-9*对IBDV诱导IFN产生的影响 | 第77-79页 |
2.3 gga-miR-9*的靶基因预测 | 第79页 |
2.4 gga-miR-9*对靶基因的调控作用分析 | 第79-80页 |
2.5 siIRF2敲除gga-miR-9*的靶基因对IBDV复制的影吼 | 第80-81页 |
3. 讨论 | 第81-82页 |
参考文献 | 第82-86页 |
第七章 传染性法氏囊病病毒感染对鸡细胞模式识别受体及抗病毒基因转录的影响 | 第86-99页 |
1. 材料与方法 | 第87-90页 |
1.1 病毒株、细胞及主要试剂 | 第87-88页 |
1.2 IBDV感染对DT40细胞PRRs及天然免疫抗病毒基因表达的差异分析 | 第88页 |
1.3 IBDV感染对鸡法氏囊组织细胞PRRs及天然免疫抗病毒基因表达的差异分析 | 第88页 |
1.4 chMDA5、chTLR3和chLGP2基因敲除对细胞天然免疫抗病毒基因表达的差异分析 | 第88-89页 |
1.5 反转录和定量PCR (qRT-PCR) | 第89-90页 |
2. 结果 | 第90-94页 |
2.1 IBDV感染对DT40细胞PRRs及天然免疫抗病毒基因表达的差异分析- | 第90-92页 |
2.2 IBDV感染对鸡法氏囊组织细胞PRRs及天然免疫抗病毒基因表达的差异分析 | 第92-94页 |
2.3 chMDA5、chTLR3和chLGP2基因敲除对细胞天然免疫抗病毒基因表达的差异分析 | 第94页 |
3. 讨论 | 第94-96页 |
参考文献 | 第96-99页 |
第八章 gga-miR-142-5p调控chMDA5抑制传染性法氏囊病病毒复制的分子机制 | 第99-119页 |
1. 材料与方法 | 第101-104页 |
1.1 病毒、细胞和试剂 | 第101页 |
1.2 IBDV感染对chMDA5表达水平的影响 | 第101页 |
1.3 chMDA5过表达和抑制表达对IBDV复制的影响 | 第101-102页 |
1.4 chMDA5过表达和抑制表达对IFN-β promoter、Mx promoter活性的影响 | 第102页 |
1.5 chMDA5过表达和抑制表达对NF-κB和IRF7信号通路的影响 | 第102页 |
1.6 生物信息学预测调控chMDA5的miRNA | 第102页 |
1.7 双荧光素酶报告系统分析gga-miR-142-5p对chMDA5 3'UTR的调控作用 | 第102-103页 |
1.8 gga-miR-142-5p对chMDA5 mRNA转录和蛋白表达的影响 | 第103页 |
1.9 gga-miR-142-5p对IFN-β promoter和Mx promoter活性的影响 | 第103页 |
1.10 gga-miR-142-5p对NF-κ B和IRF7信号通路的影响 | 第103页 |
1.11 gga-miR-142-5p对IBDV复制的影响 | 第103-104页 |
2. 结果 | 第104-112页 |
2.1 IBDV感染对chMDA5表达水平的影响 | 第104页 |
2.2 chMDA5过表达和抑制表达对IBDV复制的影响 | 第104-105页 |
2.3 chMDA5过表达和抑制表达对IFN-β promoter、Mx promoter活性的影响 | 第105-106页 |
2.4 chMDA5过表达和抑制表达对IRF7和NF-κ B信号通路的影响 | 第106-107页 |
2.5 生物信息学预测调控chMDA5的miRNA | 第107-112页 |
2.5.1 生物信息学预测调控chMDA5 (IFIH1)的miRNA | 第107-108页 |
2.5.2 双荧光素酶报告系统分析 | 第108页 |
2.5.3 Western blot和qRT-PCR分析gga-miR-142-5p对chMDA5表达的影响 | 第108-109页 |
2.5.4 gga-miR-142-5p对IFN-β promoter、Mx promoter活性的影响 2.5.4 gga-miR-142-5p 对 IFN-P promoter、Mx promoter 活性的影响 | 第109-110页 |
2.5.5 gga-miR-142-5p对IRF7和NF-κ B信号通路的影响 | 第110-111页 |
2.5.6 gga-miR-142-5p对IBDV复制的影响 | 第111-112页 |
3. 讨论 | 第112-115页 |
参考文献 | 第115-119页 |
全文总结 | 第119-120页 |
发表的论文 | 第120-121页 |
致谢 | 第121页 |