银耳多糖酶法提取及生物活性研究
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 第一章 前言 | 第15-25页 |
| 1 银耳简介 | 第15页 |
| 2 银耳多糖概述 | 第15-22页 |
| 2.1 银耳多糖主要组成结构 | 第15-16页 |
| 2.2 银耳多糖的生物活性研究 | 第16-18页 |
| 2.3 银耳多糖常见的提取方法 | 第18-19页 |
| 2.4 银耳多糖的分离纯化 | 第19-22页 |
| 3 课题的立题背景及研究内容 | 第22-25页 |
| 3.1 立题背景 | 第22-23页 |
| 3.2 研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 银耳多糖制备工艺研究 | 第25-42页 |
| 1 引言 | 第25页 |
| 2 材料与方法 | 第25页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第25页 |
| 2.2 试验试剂 | 第25页 |
| 3 试验仪器与设备 | 第25-26页 |
| 4 试验方法 | 第26-29页 |
| 4.1 提取工艺流程 | 第26页 |
| 4.2 总糖含量的测定 | 第26-27页 |
| 4.3 高压对银耳粗多糖提取率的影响 | 第27-28页 |
| 4.4 酶解对银耳粗多糖提取率的影响 | 第28-29页 |
| 5 试验结果分析 | 第29-41页 |
| 5.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第29页 |
| 5.2 高压条件下的结果与分析 | 第29-35页 |
| 5.3 酶解条件下的结果与分析 | 第35-40页 |
| 5.4 最佳条件优化后的提取率 | 第40-41页 |
| 6 讨论 | 第41页 |
| 7 本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 银耳多糖的分离纯化研究 | 第42-53页 |
| 1 引言 | 第42页 |
| 2 材料与方法 | 第42-43页 |
| 2.1 试验材料与试剂 | 第42-43页 |
| 2.2 试验试剂 | 第43页 |
| 3 试验仪器与设备 | 第43页 |
| 4 试验方法 | 第43-47页 |
| 4.1 银耳多糖提取液的制备 | 第43-44页 |
| 4.2 银耳多糖含量的测定 | 第44页 |
| 4.3 蛋白质含量的测定 | 第44页 |
| 4.5 常见的几种脱蛋白质的方法 | 第44-46页 |
| 4.6 透析处理 | 第46页 |
| 4.7 DEAE52-纤维素离子交换柱层析 | 第46-47页 |
| 4.8 Sephadex G-200凝胶柱层析 | 第47页 |
| 5 试验结果分析 | 第47-51页 |
| 5.1 蛋白质标准曲线的绘制 | 第47页 |
| 5.2 脱蛋白方法的分析比较 | 第47-50页 |
| 5.3 DEAE52-纤维素离子交换柱层析 | 第50页 |
| 5.4 Sephadex G-200凝胶柱层析 | 第50-51页 |
| 6 讨论 | 第51-52页 |
| 7 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 银耳多糖脱蛋白前后的生物活性研究 | 第53-66页 |
| 1 引言 | 第53页 |
| 2 材料与方法 | 第53-54页 |
| 2.1 试验材料与试剂 | 第53页 |
| 2.2 试验试剂 | 第53-54页 |
| 3 试验仪器与设备 | 第54页 |
| 4 试验方法 | 第54-58页 |
| 4.1 银耳多糖抗氧化性的研究 | 第54-56页 |
| 4.2 银耳多糖抗肿瘤性能的研究 | 第56-58页 |
| 5 试验结果与分析 | 第58-64页 |
| 5.1 对清除·OH自由基的能力 | 第58-59页 |
| 5.2 清除ABTS自由基(ABTS+)能力 | 第59-60页 |
| 5.3 清除DPPH自由基(DPPH·)能力 | 第60-61页 |
| 5.4 不同处理的银耳多糖的IC50值比较 | 第61页 |
| 5.5 银耳多糖联合顺铂抗肿瘤结果分析 | 第61-64页 |
| 6 讨论 | 第64-65页 |
| 7 本章小结 | 第65-66页 |
| 第五章 结论 | 第66-68页 |
| 1 结论 | 第66页 |
| 2 创新点 | 第66-67页 |
| 3 不足与展望 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
