| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第10-22页 |
| 1.1 蛹虫草的研究进展 | 第10-13页 |
| 1.1.1 蛹虫草的主要活性成分 | 第10-12页 |
| 1.1.1.1 虫草素 | 第10-11页 |
| 1.1.1.2 虫草酸 | 第11页 |
| 1.1.1.3 虫草多糖 | 第11页 |
| 1.1.1.4 其他活性物质 | 第11-12页 |
| 1.1.2 蛹虫草的人工栽培方法 | 第12-13页 |
| 1.1.2.1 固体栽培 | 第12页 |
| 1.1.2.2 液体栽培 | 第12-13页 |
| 1.2 多糖提取方法的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2.1 物理方法 | 第13-14页 |
| 1.2.1.1 闪式提取法 | 第13页 |
| 1.2.1.2 超声波法 | 第13页 |
| 1.2.1.3 微波法 | 第13-14页 |
| 1.2.2 酶法 | 第14页 |
| 1.3 虫草多糖的功能性研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3.1 虫草多糖抗肿瘤活性研究 | 第14-15页 |
| 1.3.2 虫草多糖对肝肾的保护作用 | 第15页 |
| 1.3.3 虫草多糖对免疫调节的作用 | 第15-16页 |
| 1.3.4 虫草多糖降血糖的作用 | 第16页 |
| 1.4 酒精性肝损伤保护作用的研究进展 | 第16-20页 |
| 1.4.1 酒精肝损伤的发病机制 | 第16-19页 |
| 1.4.1.1 免疫和炎症机制 | 第16-17页 |
| 1.4.1.2 乙醇及其代谢产物乙醛对肝脏的损伤机制 | 第17-18页 |
| 1.4.1.3 氧化应激 | 第18页 |
| 1.4.1.4 营养机制 | 第18-19页 |
| 1.4.2 酒精性肝损伤的治疗 | 第19-20页 |
| 1.5 本课题的研究内容和意义 | 第20-22页 |
| 1.5.1 研究内容 | 第20页 |
| 1.5.2 研究意义 | 第20-22页 |
| 第二章 不同提取方法对蛹虫草基质多糖的特性研究 | 第22-31页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第22-26页 |
| 2.1.1 试验原料与试剂 | 第22页 |
| 2.1.2 仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.3 试验方法 | 第23-26页 |
| 2.1.3.1 蛹虫草基质粗多糖溶液的提取 | 第23-24页 |
| 2.1.3.1.1 水提法提取 | 第23页 |
| 2.1.3.1.2 超声波法提取 | 第23页 |
| 2.1.3.1.3 超声波-酶法提取 | 第23页 |
| 2.1.3.1.4 微波法提取 | 第23页 |
| 2.1.3.1.5 微波-酶法提取 | 第23-24页 |
| 2.1.3.1.6 酶解法提取 | 第24页 |
| 2.1.3.2 脱色 | 第24页 |
| 2.1.3.3 脱蛋白 | 第24页 |
| 2.1.3.4 蛹虫草基质多糖含量测定及得率计算 | 第24页 |
| 2.1.3.5 多糖粘度的测定 | 第24页 |
| 2.1.3.6 蛹虫草基质多糖体外抗氧化性测定 | 第24-26页 |
| 2.1.3.6.1 DPPH自由基清除能力测定 | 第24-25页 |
| 2.1.3.6.2 羟基自由基清除试验 | 第25页 |
| 2.1.3.6.3 超氧阴离子自由基清除试验 | 第25页 |
| 2.1.3.6.4 还原力测定 | 第25-26页 |
| 2.2 结果与分析 | 第26-30页 |
| 2.2.1 不同提取方法下蛹虫草基质多糖得率比较 | 第26页 |
| 2.2.2 多糖溶液黏度的比较 | 第26-27页 |
| 2.2.3 不同提取方法下蛹虫草基质多糖抗氧化性比较 | 第27-30页 |
| 2.2.3.1 DPPH自由基清除能力 | 第27-28页 |
| 2.2.3.2 羟基自由基清除能力 | 第28页 |
| 2.2.3.3 超氧阴离子自由基清除能力 | 第28-29页 |
| 2.2.3.4 总还原力测定 | 第29-30页 |
| 2.3 结论 | 第30-31页 |
| 第三章 CMSP对酒精所致小鼠急性肝损伤的保护作用 | 第31-37页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第31-33页 |
| 3.1.1 原料和试剂 | 第31页 |
| 3.1.2 仪器 | 第31-32页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第32-33页 |
| 3.1.3.1 CMSP的制备 | 第32页 |
| 3.1.3.2 酒精诱导肝损伤动物模型的建立 | 第32页 |
| 3.1.3.3 一般情况观察 | 第32页 |
| 3.1.3.4 指标检测 | 第32页 |
| 3.1.3.5 肝组织病理切片制作 | 第32页 |
| 3.1.3.6 统计学分析 | 第32-33页 |
| 3.2 结果与分析 | 第33-36页 |
| 3.2.1 一般情况观察及死亡率 | 第33页 |
| 3.2.2 指标检测结果 | 第33-35页 |
| 3.2.2.1 CMSP对酒精所致急性肝损伤小鼠肝脏、脾脏和胸腺指数的影响 | 第33-34页 |
| 3.2.2.2 CMSP对酒精所致急性肝损伤小鼠血浆中ALT、AST、SOD和TG的影响 | 第34-35页 |
| 3.2.2.3 CMSP对酒精所致急性肝损伤小鼠肝匀浆中SOD、GSH-Px、MDA和GSH的影响 | 第35页 |
| 3.2.3 CMSP对酒精所致急性肝损伤小鼠肝组织病理变化影响 | 第35-36页 |
| 3.3 结论 | 第36-37页 |
| 第四章 CMSP对酒精所致小鼠亚急性肝损伤的保护作用 | 第37-44页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第37-38页 |
| 4.1.1 试验原料和试剂 | 第37页 |
| 4.1.2 仪器 | 第37页 |
| 4.1.3 试验方法 | 第37-38页 |
| 4.1.3.1 CMSP的制备 | 第37页 |
| 4.1.3.2 酒精诱导肝损伤动物模型的建立 | 第37-38页 |
| 4.1.3.3 一般情况观察 | 第38页 |
| 4.1.3.4 指标检测 | 第38页 |
| 4.1.3.5 肝组织病理切片制作 | 第38页 |
| 4.1.3.6 统计学分析 | 第38页 |
| 4.2 结果与分析 | 第38-43页 |
| 4.2.1 一般情况观察及体重变化 | 第38-39页 |
| 4.2.2 指标检测结果 | 第39-42页 |
| 4.2.2.1 CMSP对酒精所致亚急性肝损伤小鼠肝脏指数的影响 | 第39-40页 |
| 4.2.2.2 CMSP对酒精所致亚急性肝损伤小鼠血浆中GLU、TBIL、TG、CHOL、ALT、AST、ALP和LDH的影响 | 第40-41页 |
| 4.2.2.3 CMSP对酒精所致亚急性肝损伤小鼠肝匀浆中ADH、GSH-PX、MDA和GSH的影响 | 第41-42页 |
| 4.2.3 CMSP对酒精所致急性肝损伤小鼠肝组织病理变化影响 | 第42-43页 |
| 4.3 结论 | 第43-44页 |
| 第五章 结果与讨论 | 第44-49页 |
| 5.1 不同提取方法对蛹虫草基质多糖的特性研究 | 第44-45页 |
| 5.2 CMSP对酒精所致小鼠急性肝损伤的保护作用 | 第45-46页 |
| 5.3 CMSP对酒精所致小鼠亚急性肝损伤的保护作用 | 第46-49页 |
| 参考文献 | 第49-57页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
