英文缩略词对照表 | 第5-7页 |
中文摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-12页 |
前言 | 第13-14页 |
材料与方法 | 第14-22页 |
1 实验材料 | 第14-15页 |
1.1 细胞系 | 第14页 |
1.2 实验动物 | 第14页 |
1.3 实验试剂 | 第14-15页 |
1.4 主要实验器材 | 第15页 |
2 实验方法 | 第15-22页 |
2.1 细胞培养 | 第15页 |
2.2 耐药细胞株的诱导 | 第15-16页 |
2.3 细胞增殖活性分析 | 第16页 |
2.4 Western blot | 第16页 |
2.5 免疫荧光染色 | 第16-17页 |
2.6 半定量RT-PCR和实时定量RT-PCR | 第17-18页 |
2.7 划痕修复实验 | 第18页 |
2.8 3D细胞培养 | 第18页 |
2.9 细胞转染 | 第18-19页 |
2.10启动子活性分析 | 第19页 |
2.11失巢凋亡分析 | 第19页 |
2.12流式细胞分析 | 第19页 |
2.13细胞微球形成 | 第19-20页 |
2.14软琼脂克隆形成 | 第20页 |
2.15裸鼠移植瘤模型 | 第20页 |
2.16免疫组织化学染色 | 第20-21页 |
2.17 ELISA | 第21页 |
2.18重组腺病毒感染 | 第21页 |
2.19细胞凋亡分析 | 第21-22页 |
2.20统计学分析 | 第22页 |
实验结果 | 第22-46页 |
1. 获得性赫赛汀耐药细胞株的建立 | 第22页 |
2. 赫赛汀长期处理诱导胃癌细胞发生EMT | 第22-26页 |
3. 赫赛汀耐药的胃癌细胞具有高迁移、侵袭、致瘤和转移潜能 | 第26-31页 |
4. 赫赛汀耐药的胃癌细胞获得肿瘤干细胞样表型 | 第31-34页 |
5. 获得性赫赛汀耐药的胃癌细胞中生存信号发生偏转 | 第34-36页 |
6. 获得性赫赛汀耐药的胃癌细胞自分泌IL-6 | 第36-39页 |
7. 获得性赫赛汀耐药的胃癌细胞中存在IL-6/Notch信号环路 | 第39-46页 |
讨论 | 第46-49页 |
结论 | 第49页 |
全文创新点 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-54页 |
文献综述 | 第54-63页 |
参考文献 | 第59-63页 |
个人简历 | 第63-65页 |
致 谢 | 第65页 |