| 摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第1章 绪论 | 第20-33页 |
| 1.1 生物传感器的分类与应用 | 第20-23页 |
| 1.1.1 生物传感器的结构 | 第20-21页 |
| 1.1.2 生物传感器的分类 | 第21-22页 |
| 1.1.3 生物传感器的应用 | 第22-23页 |
| 1.2 聚集诱导发光 | 第23-27页 |
| 1.2.1 聚集促使猝灭和聚集诱导发光 | 第23-24页 |
| 1.2.2 聚集诱导发光机理 | 第24-25页 |
| 1.2.3 AIE效应在生物传感器方面的应用 | 第25-27页 |
| 1.3 静电纺丝在生物传感器领域的应用 | 第27-28页 |
| 1.3.1 静电纺丝的原理和特点 | 第27-28页 |
| 1.3.2 静电纺丝在生物传感器领域的应用 | 第28页 |
| 1.4 课题的立题意义和研究内容 | 第28-33页 |
| 1.4.1 本论文的研究目的和意义 | 第28-29页 |
| 1.4.2 本论文的研究内容 | 第29-31页 |
| 1.4.3 本论文的创新点 | 第31-33页 |
| 第2章 基于AIE效应检测细菌的荧光纤维膜 | 第33-49页 |
| 2.1 实验部分 | 第35-39页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第35页 |
| 2.1.2 三聚氰氯修饰TPE(TPEC)的制备 | 第35-36页 |
| 2.1.3 TPEC的AIE效应表征 | 第36页 |
| 2.1.4 表面功能化电纺纤维的制备 | 第36-37页 |
| 2.1.5 表面功能化电纺纤维的表征 | 第37-38页 |
| 2.1.6 细菌培养 | 第38-39页 |
| 2.1.7 PSMA-PEG-TPEC-Man纤维膜检测细菌 | 第39页 |
| 2.1.8 统计学分析 | 第39页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第39-47页 |
| 2.2.1 TPEC的表征 | 第39-41页 |
| 2.2.2 PSMA-PEG-TPEC-Man纤维膜的表征 | 第41-43页 |
| 2.2.3 PSMA-PEG-TPEC-Man纤维膜检测细菌 | 第43-44页 |
| 2.2.4 接枝手臂对纤维膜荧光性质的影响 | 第44-46页 |
| 2.2.5 甘露糖密度对PSMA-PEG-TPEC-Man荧光性质的影响 | 第46-47页 |
| 2.2.6 PSMA-PEG-TPEC-Man纤维膜的抗干扰能力 | 第47页 |
| 2.3 本章小结 | 第47-49页 |
| 第3章 TPE探针用于耐药细菌的检测 | 第49-67页 |
| 3.1 实验部分 | 第50-56页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第50-51页 |
| 3.1.2 TPE探针的合成 | 第51-52页 |
| 3.1.3 TPE衍生物的表征 | 第52-53页 |
| 3.1.4 TPE探针对β-内酰胺酶的荧光响应 | 第53页 |
| 3.1.5 适配体修饰PSMA/PS纤维膜的制备 | 第53页 |
| 3.1.6 PSMA/PS-A纤维膜的表征 | 第53-54页 |
| 3.1.7 细菌培养 | 第54页 |
| 3.1.8 细菌捕获和荧光检测 | 第54-55页 |
| 3.1.9 探针产生ROS和细菌杀灭 | 第55页 |
| 3.1.10 统计学分析 | 第55-56页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第56-66页 |
| 3.2.1 TPE衍生物和探针的表征 | 第56-57页 |
| 3.2.2 TPE探针对β-内酰胺酶的荧光响应 | 第57-58页 |
| 3.2.3 PSMA/PS-A纤维膜的表征 | 第58-59页 |
| 3.2.4 适配体接枝密度对纤维膜捕获细菌效率的影响 | 第59-61页 |
| 3.2.5 TPE探针对捕获细菌的耐药性检测 | 第61-63页 |
| 3.2.6 TPE探针定量耐药细菌 | 第63-64页 |
| 3.2.7 ROS的产生和细菌杀灭 | 第64-65页 |
| 3.2.8 PSMA/PS-A纤维膜的重复使用 | 第65-66页 |
| 3.3 本章小结 | 第66-67页 |
| 第4章 比率型荧光纤维膜用于ALP的检测 | 第67-83页 |
| 4.1 实验部分 | 第69-73页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第69页 |
| 4.1.2 TPE-2N~+的合成 | 第69-70页 |
| 4.1.3 醛基荧光素的合成 | 第70-71页 |
| 4.1.4 胺化PET纤维膜的制备 | 第71页 |
| 4.1.5 PET纤维膜的表面修饰 | 第71-72页 |
| 4.1.6 纤维膜的表征 | 第72页 |
| 4.1.7 比率法检测ALP | 第72页 |
| 4.1.8 比率法检测真实样品中的ALP | 第72-73页 |
| 4.1.9 统计学分析 | 第73页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第73-82页 |
| 4.2.1 纤维膜的表征 | 第73-74页 |
| 4.2.2 氨基密度对纤维膜荧光强度的影响 | 第74-75页 |
| 4.2.3 PET-Flu-PO4/TPE纤维膜对ALP的荧光响应 | 第75-77页 |
| 4.2.4 荧光比率法检测定量ALP | 第77-78页 |
| 4.2.5 氨基密度对ALP检测的影响 | 第78-79页 |
| 4.2.6 PET-Flu-PO4纤维检测ALP | 第79-80页 |
| 4.2.7 PET-Flu-PO4/TPE纤维膜的抗干扰能力 | 第80-81页 |
| 4.2.8 检测血清样品中的ALP | 第81-82页 |
| 4.3 本章小结 | 第82-83页 |
| 第5章 比率型荧光纤维用于肝素和胰蛋白酶的检测 | 第83-102页 |
| 5.1 实验部分 | 第84-89页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第84页 |
| 5.1.2 TPE衍生物的合成 | 第84-86页 |
| 5.1.3 TPE衍生物的表征 | 第86页 |
| 5.1.4 PSMA-PhB+TPE/Pro纤维膜的制备 | 第86-87页 |
| 5.1.5 PSMA-PhB+ TPE /Pro纤维膜的表征 | 第87页 |
| 5.1.6 功能化的纤维膜检测肝素 | 第87-88页 |
| 5.1.7 PSMA-PhB+TPE/Pro纤维膜的特异性和重复使用性 | 第88页 |
| 5.1.8 胰蛋白酶的检测 | 第88-89页 |
| 5.1.9 纤维膜检测真实样品中的肝素和胰蛋白酶 | 第89页 |
| 5.1.10 统计学分析 | 第89页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第89-101页 |
| 5.2.1 TPE衍生物的合成和表征 | 第89-91页 |
| 5.2.2 PSMA-PhB+TPE/Pro纤维膜的表征 | 第91-92页 |
| 5.2.3 PhB和TPE衍生物5的接枝密度对荧光性能的影响 | 第92-93页 |
| 5.2.4 PSMA-PhB+TPE/Pro纤维对肝素的荧光响应 | 第93-94页 |
| 5.2.5 比率荧光检测肝素 | 第94-96页 |
| 5.2.6 PhB和TPE衍生物5的接枝密度对肝素检测的影响 | 第96-97页 |
| 5.2.7 PSMA-PhB/Pro纤维对肝素的荧光响应 | 第97-98页 |
| 5.2.8 PSMA-PhB+TPE/Pro纤维的特异性、稳定性和重复使用性 | 第98-99页 |
| 5.2.9 PSMA-PhB+TPE/Pro纤维膜对胰蛋白酶的荧光响应 | 第99-100页 |
| 5.2.10 PSMA-PhB+TPE/Pro纤维检测实际样品 | 第100-101页 |
| 5.3 本章小结 | 第101-102页 |
| 第6章 基于放大反应机制对过氧化氢的检测 | 第102-121页 |
| 6.1 实验部分 | 第104-110页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第104-105页 |
| 6.1.2 化合物6和TPE-SO_3的合成 | 第105-108页 |
| 6.1.3 PET纤维的制备及功能化 | 第108页 |
| 6.1.4 PSMA的制备及ChOX的固定 | 第108-109页 |
| 6.1.5 功能化纤维膜的表征 | 第109-110页 |
| 6.1.6 纤维膜检测H_2O_2和胆碱 | 第110页 |
| 6.1.7 统计学分析 | 第110页 |
| 6.2 结果和讨论 | 第110-120页 |
| 6.2.1 PET-Ch/TPE纤维的表征 | 第110-111页 |
| 6.2.2 PSMA-ChOX纤维的表征 | 第111-113页 |
| 6.2.3 TPE-SO_3的吸附量对纤维荧光的影响 | 第113-115页 |
| 6.2.4 PSMA-ChOX对自由胆碱和Ch/TPE-SO_3复合物的催化作用 | 第115-116页 |
| 6.2.5 PET-Ch/TPE纤维和PET-Ch/TPE+PSMA-ChOX复合纤维对H_2O_2的荧光响应 | 第116-118页 |
| 6.2.6 PET-Ch/TPE+PSMA-ChOX复合纤维的特异性和重复使用性 | 第118-119页 |
| 6.2.7 PET-Ch/TPE+PSMA-ChOX复合纤维定量检测胆碱 | 第119-120页 |
| 6.3 本章小结 | 第120-121页 |
| 第7章 自驱动双面短纤维对细菌的检测 | 第121-136页 |
| 7.1 实验部分 | 第123-127页 |
| 7.1.1 实验材料 | 第123页 |
| 7.1.2 双面短纤维的制备 | 第123-124页 |
| 7.1.3 双面短纤维的表面修饰 | 第124-125页 |
| 7.1.4 双面短纤维的表征 | 第125页 |
| 7.1.5 CAT固定化表征 | 第125-126页 |
| 7.1.6 双面短纤维的运动表征 | 第126页 |
| 7.1.7 双面短纤维对细菌的荧光响应 | 第126-127页 |
| 7.1.8 统计学分析 | 第127页 |
| 7.2 结果与讨论 | 第127-134页 |
| 7.2.1 双面短纤维的结构和形貌 | 第127-128页 |
| 7.2.2 固定化酶的最适条件 | 第128-129页 |
| 7.2.3 双面短纤维的运动轨迹 | 第129-131页 |
| 7.2.4 双面短纤维对细菌的荧光响应 | 第131-132页 |
| 7.2.5 双面短纤维对细菌的定量检测 | 第132-134页 |
| 7.3 本章小结 | 第134-136页 |
| 全文总结 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
| 参考文献 | 第139-153页 |
| 附录 | 第153-154页 |
| 攻读博士期间发表的论文 | 第154-155页 |
