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斑马鱼TIM家族基因鉴定及其在适应性体液免疫应答中的功能研究

致谢第6-7页
摘要第7-8页
ABSTRACT第8-9页
1 文献综述第15-32页
    1.1 TIM家族的基本概况第15-18页
        1.1.1 TIM-1第15-16页
        1.1.2 TIM-2第16页
        1.1.3 TIM-3第16-17页
        1.1.4 TIM-4第17-18页
    1.2 TIM分子的生物学功能第18-24页
        1.2.1 T细胞活化的共刺激功能第18-19页
        1.2.2 TIM与细胞凋亡第19-20页
        1.2.3 TIM与细胞自噬第20-21页
        1.2.4 TIM与细胞迁移第21-22页
        1.2.5 TIM与细胞耐受及移植第22-23页
        1.2.6 TIM与病毒感染第23-24页
    1.3 TIM分子相关免疫疾病第24-27页
        1.3.1 TIM与过敏性疾病第24-25页
        1.3.2 TIM与系统性红斑狼疮第25页
        1.3.3 TIM与艾滋病第25页
        1.3.4 TIM与类风湿性关节炎第25-26页
        1.3.5 TIM与脑疟第26页
        1.3.6 TIM与多发性硬化第26-27页
    1.4 TIM分子的可溶性形式第27页
    1.5 TIM分子的互作第27-30页
    1.6 TIM分子研究中存在的问题第30-32页
2 实验研究第32-91页
    2.1 DrTIM-1L分子鉴定及其在适应性体液免疫活化中的作用第32-70页
        2.1.1 材料与方法第32-34页
            2.1.1.1 实验动物第32-33页
            2.1.1.2 主要试剂第33-34页
        2.1.2 实验方法第34-48页
            2.1.2.1 DrTIM-1分子克隆第34-35页
            2.1.2.2 DrTIM-1基因克隆和序列测定第35-37页
            2.1.2.3 3'-RACE反应第37页
            2.1.2.4 生物信息学结构分析第37-38页
            2.1.2.5 原核表达质粒的构建第38页
            2.1.2.6 DrTIM-1L重组蛋白的诱导表达第38-39页
            2.1.2.7 多克隆抗体的制备第39页
            2.1.2.8 抗体的纯化第39-40页
            2.1.2.9 间接ELISA法测定抗血清效价第40页
            2.1.2.10 Western blot分析第40-41页
            2.1.2.11 真核表达质粒的构建第41页
            2.1.2.12 细胞培养和转染第41页
            2.1.2.13 DrTIM-1L组织分布测定第41-42页
            2.1.2.14 斑马鱼淋巴细胞的分离第42页
            2.1.2.15 间接免疫荧光双染色分析第42-43页
            2.1.2.16 流式检测DrTIM-1L~+CD4~+细胞动态增殖第43页
            2.1.2.17 细胞分选、培养以及鉴定第43-44页
            2.1.2.18 DrTIM-1L的分子迁移实验第44页
            2.1.2.19 DrTIM-1L和DrTIM-4L的siRNA制备第44-45页
            2.1.2.20 核心质粒的构建以及慢病毒包装第45页
            2.1.2.21 DrTIM-1LsiRNA干扰效果评估第45-46页
            2.1.2.22 体内抗体封闭和siRNA干扰后检测T细胞的增殖活化第46页
            2.1.2.23 体外干扰后检测T细胞的增殖活化第46页
            2.1.2.24 抗体封闭对机体体液免疫的影响第46页
            2.1.2.25 免疫保护实验第46-47页
            2.1.2.26 统计学分析方法第47-48页
        2.1.3 结果与分析第48-70页
            2.1.3.1 DrTIM-1L基因克隆第48页
            2.1.3.2 DrTIM-1L基因序列分析第48页
            2.1.3.3 DrTIM-1L蛋白序列分析第48-50页
            2.1.3.4 DrTIM-1L染色体定位第50-51页
            2.1.3.5 DrTIM-1L基因结构特征分析第51页
            2.1.3.6 DrTIM-1L分子结构特征性分析第51-54页
            2.1.3.7 DrTIM-1L三维结构对比分析第54-56页
            2.1.3.8 DrTIM-1L进化树构建与分析第56页
            2.1.3.9 DrTIM-1L重组质粒的构建第56-57页
            2.1.3.10 DrTIM-1L蛋白表达纯化和抗体制备第57-58页
            2.1.3.11 DrTIM-1L的亚细胞定位分析第58-60页
            2.1.3.12 DrTIM-1L表达于CD4~+T细胞第60-61页
            2.1.3.13 DrTIM-1L在CD4~+T细胞内的迁移第61-63页
            2.1.3.14 DrTIM-1L的组织表达分布第63页
            2.1.3.15 抗原刺激后DrTIM-1L~+CD4~+细胞的变化第63-64页
            2.1.3.16 APC和T的磁珠分选与鉴定第64页
            2.1.3.17 pSUPER-DrTIM-1L干扰质粒的筛选第64-65页
            2.1.3.18 病毒的感染能力评估结果第65-66页
            2.1.3.19 DrTIM-1L参与CD4~+T细胞增殖的体内试验第66-67页
            2.1.3.20 DrTIM-1L促进APC介导的T细胞增殖活化的体外试验第67页
            2.1.3.21 DrTIM-1L参与IgM的产生第67-68页
            2.1.3.22 DrTIM-1L参与机体的免疫防御第68-70页
    2.2 DrTIM-4L分离鉴定及其对T细胞活化和体液免疫的调节作用第70-88页
        2.2.1 实验方法第70-71页
            2.2.1.1 DrTIM-4L和sDrTIM-4L基因预测第70页
            2.2.1.2 sDrTIM-4L原核表达质粒的构建第70页
            2.2.1.3 sDrTIM-4L融合蛋白的诱导表达第70-71页
            2.2.1.4 带GST标签的sDrTIM-4L融合蛋白的纯化第71页
            2.2.1.5 sDrTIM-4L蛋白对T细胞增殖的影响第71页
            2.2.1.6 DrTIM-4L蛋白表达以及免疫学功能研究第71页
        2.2.2 结果与分析第71-88页
            2.2.2.1 DrTIM-4L基因克隆和分析第71-73页
            2.2.2.2 DrTIM-4L蛋白结构特征第73-76页
            2.2.2.3 DrTIM-4L原核和真核表达质粒的构建第76页
            2.2.2.4 DrTIM-4L蛋白的诱导表达第76-77页
            2.2.2.5 DrTIM-4L多克隆抗体的制备第77页
            2.2.2.6 抗体的特异性检测第77-78页
            2.2.2.7 可溶性蛋白sDrTIM-4L诱导表达以及纯化第78页
            2.2.2.8 DrTIM-4L是一种膜蛋白分子第78-79页
            2.2.2.9 DrTIM-4L表达在抗原递细胞表面第79-80页
            2.2.2.10 DrTIM-4LsiRNA干扰体系的构建与评价第80-81页
            2.2.2.11 DrTIM-4L的组织分布第81-82页
            2.2.2.12 DrTIM-4L受抗原刺激诱导表达第82页
            2.2.2.13 抗原刺激后DrTIM-4L~+MHCII~+双阳性细胞的动态变化第82-83页
            2.2.2.14 DrTIM-4L活化CD4~+T细胞的体内试验第83-84页
            2.2.2.15 DrTIM-4L活化CD4~+T的体外试验第84-85页
            2.2.2.16 sDrTIM-4L蛋白对T细胞增殖的抑制作用第85-87页
            2.2.2.17 DrTIM-4L参与机体的免疫保护作用第87-88页
    2.3 DrTIM-1L和DrTIM-4L互作探究第88-91页
        2.3.1 实验方法第88-89页
            2.3.1.1 酶联免疫吸附法第88页
            2.3.1.2 免疫共沉淀第88页
            2.3.1.3 流式细胞术第88-89页
        2.3.2 实验结果第89-91页
            2.3.2.1 DrTIM-1L和DrTIM-4L具有相互结合的能力第89-90页
            2.3.2.2 磷脂酰丝氨酸可促进DrTIM-1L和DrTIM-4L结合第90-91页
3 讨论第91-95页
附表1 引物汇总第95-98页
附表2 siRNA干扰引物汇总第98-99页
本文所涉及的基因序列号以及来源第99-100页
参考文献第100-105页

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