| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 引言 | 第15-27页 |
| 1.1 植物遭受的非生物胁迫及其响应机制 | 第15-16页 |
| 1.2 植物中的NAC转录因子 | 第16-18页 |
| 1.3 NAC在植物生长发育中的作用 | 第18-22页 |
| 1.3.1 顶端分生组织的形成、胚胎及花器官的发育 | 第18-20页 |
| 1.3.2 根系形成、细胞分裂和植物激素信号转导 | 第20-21页 |
| 1.3.3 植物次生壁合成 | 第21页 |
| 1.3.4 果实发育 | 第21页 |
| 1.3.5 叶片衰老 | 第21-22页 |
| 1.4 NAC调控植物对生物胁迫的响应 | 第22-23页 |
| 1.5 NAC调控植物对非生物胁迫的响应 | 第23-25页 |
| 1.6 NAC转录因子顺式作用元件和体内的下游靶标基因 | 第25页 |
| 1.7 本研究的目的和意义 | 第25-27页 |
| 第二章 氮缺乏条件下黄瓜转录组测序及NAC的调控机制 | 第27-38页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 试验材料和处理 | 第27-28页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第27-28页 |
| 2.2.2 试验处理 | 第28页 |
| 2.3 试验方法 | 第28-31页 |
| 2.3.1 RNA提取、文库构建 | 第28页 |
| 2.3.2 与参考基因组比对分析及基因表达水平定量 | 第28页 |
| 2.3.3 差异表达基因（DEGs）的鉴定 | 第28-29页 |
| 2.3.4 生物信息学分析及共表达网络的构建 | 第29页 |
| 2.3.5 RT-qPCR验证RNA-seq结果的准确性 | 第29-30页 |
| 2.3.6 抗坏血酸含量测定 | 第30-31页 |
| 2.4 结果与分析 | 第31-37页 |
| 2.4.1 测序数据质量评估 | 第31页 |
| 2.4.2 参考序列比对分析 | 第31-33页 |
| 2.4.3 RT-qPCR鉴定RNA-Seq数据的准确性 | 第33-34页 |
| 2.4.4 DEGs的GO、KEGG及动态表达模式聚类分析 | 第34-35页 |
| 2.4.5 氮缺乏影响黄瓜抗坏血酸含量 | 第35-36页 |
| 2.4.6 NAC调控细胞壁重构的分子机制的推测 | 第36-37页 |
| 2.5 讨论 | 第37-38页 |
| 2.5.1 测序质量及可靠性评估 | 第37页 |
| 2.5.2 NAC对短期氮缺乏的响应及其调控AsA含量变化的分子机制 | 第37-38页 |
| 第三章 黄瓜中NAC基因家族的鉴定 | 第38-48页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 试验方法 | 第38-39页 |
| 3.2.1 黄瓜中NAC基因家族的鉴定及基本特征分析 | 第38页 |
| 3.2.2 CsNAC基因的系统发育、保守motifs和跨膜结构的种内比较 | 第38-39页 |
| 3.2.3 CsNAC基因与AtNAC和OsNAC的物种间系统发育分析 | 第39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-46页 |
| 3.3.1 黄瓜中NAC基因的鉴定 | 第39-43页 |
| 3.3.2 黄瓜NAC蛋白的系统发育、保守motifs及膜结合位点的分析 | 第43-45页 |
| 3.3.3 黄瓜与拟南芥、水稻之间NAC基因的系统发育分析 | 第45-46页 |
| 3.4 讨论 | 第46-48页 |
| 3.4.1 黄瓜中NAC基因家族的生物学分析 | 第46-47页 |
| 3.4.2 NAC基因功能与系统发育亚族之间的关系 | 第47-48页 |
| 第四章 NAC基因在黄瓜生长发育及非生物胁迫响应中的表达分析 | 第48-62页 |
| 4.1 引言 | 第48页 |
| 4.2 试验材料与方法 | 第48-54页 |
| 4.2.1 试验材料与处理 | 第48-49页 |
| 4.2.2 试验方法 | 第49-54页 |
| 4.3 结果与分析 | 第54-60页 |
| 4.3.1 正常生长条件下CsNAC基因的时空表达模式 | 第54-56页 |
| 4.3.2 CsNAC基因在非生物胁迫和激素处理条件下的差异表达模式 | 第56-60页 |
| 4.4 讨论 | 第60-62页 |
| 4.4.1 CsNAC基因在正常生长条件下的组织偏好表达 | 第60页 |
| 4.4.2 CsNAC基因在不同非生物胁迫和激素处理下的差异表达 | 第60-62页 |
| 第五章 NAC调控番茄果实细胞壁降解的作用机制 | 第62-78页 |
| 5.1 引言 | 第62页 |
| 5.2 试验材料 | 第62-63页 |
| 5.2.1 番茄材料 | 第62-63页 |
| 5.2.2 烟草材料 | 第63页 |
| 5.2.3 亚细胞定位的植物材料 | 第63页 |
| 5.3 试验方法 | 第63-71页 |
| 5.3.1 番茄中的同源NAC及细胞壁重构酶基因搜索 | 第63页 |
| 5.3.2 半定量PCR和实时荧光定量PCR检测 | 第63-65页 |
| 5.3.3 总抗坏血酸含量的测定 | 第65页 |
| 5.3.4 In-fusion构建重组载体 | 第65-67页 |
| 5.3.5 烟草的双荧光素检测系统 | 第67-70页 |
| 5.3.6 亚细胞定位 | 第70-71页 |
| 5.4 结果与分析 | 第71-77页 |
| 5.4.1 NAC及细胞壁重构酶基因在番茄果实发育过程中的表达分析 | 第71-73页 |
| 5.4.2 番茄果实发育过程中T-AsA含量的变化 | 第73-74页 |
| 5.4.3 NAC05g能够激活PE02的转录 | 第74-76页 |
| 5.4.4 NAC05g转录因子定位于细胞核中 | 第76-77页 |
| 5.5 讨论 | 第77-78页 |
| 第六章 全文讨论 | 第78-80页 |
| 第七章 全文结论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-97页 |
| 附录 | 第97-133页 |
| 附录A 图表 | 第97-122页 |
| 附录B 黄瓜中CsWRKY46转录因子N端肽段的原核表达及其特异性抗体的制备和应用 | 第122-133页 |
| 致谢 | 第133-134页 |
| 作者简历 | 第134页 |
