| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第12-26页 |
| 1.1 武昌罗索线虫的研究概况 | 第12-13页 |
| 1.2 武昌罗索线虫主要宿主 | 第13-14页 |
| 1.2.1 致倦库蚊 | 第13页 |
| 1.2.2 埃及伊蚊和白纹伊蚊 | 第13-14页 |
| 1.3 昆虫免疫机制 | 第14-20页 |
| 1.3.1 体液免疫 | 第14-19页 |
| 1.3.2 细胞免疫 | 第19页 |
| 1.3.3 自噬途径 | 第19-20页 |
| 1.4 模式识别受体 | 第20-22页 |
| 1.5 C型凝集素 | 第22-24页 |
| 1.5.1 CTLs的结构特征 | 第22页 |
| 1.5.2 CTLs在昆虫中的研究概况 | 第22-24页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第24-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-41页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-29页 |
| 2.1.1 实验动物的获取 | 第26页 |
| 2.1.2 主要菌株与载体 | 第26页 |
| 2.1.3 主要试剂与药品 | 第26-27页 |
| 2.1.4 主要仪器与设备 | 第27页 |
| 2.1.5 引物序列 | 第27-28页 |
| 2.1.6 常用溶液配制 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-41页 |
| 2.2.1 致倦库蚊被武昌罗索线感染虫后的存活率分析 | 第29-30页 |
| 2.2.2 库蚊总RNA的提取 | 第30页 |
| 2.2.3 总RNA中基因组DNA的消化和反转录 | 第30-31页 |
| 2.2.4 致倦库蚊被线虫感染后不同时期免疫基因的表达水平 | 第31-32页 |
| 2.2.5 CqCTL12和CqATG8基因的克隆 | 第32-34页 |
| 2.2.6 重组蛋白rCqCTL12和rCqATG8的原核表达与纯化 | 第34-39页 |
| 2.2.7 rCqCTL12对细菌的体外凝集 | 第39页 |
| 2.2.8 rCqCTL12与武昌罗索线虫感染期幼虫的体外结合 | 第39-41页 |
| 3 结果与分析 | 第41-64页 |
| 3.1 致倦库蚊被武昌罗索线虫感染后的存活率分析 | 第41-42页 |
| 3.2 致倦库蚊总RNA的提取和反转录 | 第42-43页 |
| 3.3 致倦库蚊被线虫感染后不同时期免疫基因的表达水平 | 第43-52页 |
| 3.3.1 模式识别受体 | 第43-45页 |
| 3.3.2 Toll信号通路 | 第45-46页 |
| 3.3.3 IMD信号通路 | 第46-47页 |
| 3.3.4 JAK/STAT信号通路 | 第47-49页 |
| 3.3.5 凝结黑化途径 | 第49-50页 |
| 3.3.6 免疫效应分子 | 第50-51页 |
| 3.3.7 自噬途径 | 第51-52页 |
| 3.4 CqCTL12和CqATG8基因的克隆 | 第52-56页 |
| 3.4.1 CqCTL12和CqATG8基因的扩增 | 第52-53页 |
| 3.4.2 CqCTL12和CqATG8基因克隆载体的构建和阳性检测 | 第53页 |
| 3.4.3 CqCTL12和CqATG8基因的序列分析 | 第53-56页 |
| 3.5 重组蛋白rCqCTL12和rCqATG8的原核表达与纯化 | 第56-59页 |
| 3.5.1 CqCTL12和CqATG8基因成熟肽编码区的扩增和双酶切 | 第56-57页 |
| 3.5.2 PET32a空载质粒的提取和双酶切 | 第57页 |
| 3.5.3 表达载体的构建、阳性检测和双酶切验证 | 第57-58页 |
| 3.5.4 重组蛋白rCqCTL12和rCqATG8的表达和纯化 | 第58-59页 |
| 3.6 rCqCTL12对细菌的体外凝集 | 第59-61页 |
| 3.7 rCqCTL12与武昌罗索线虫感染期幼虫的体外结合 | 第61-64页 |
| 4 讨论 | 第64-67页 |
| 5 小结与展望 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-78页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
