| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 第一章 综述 | 第13-26页 |
| 1 马尾松花粉 | 第13页 |
| 2 多糖及其生物学活性 | 第13-16页 |
| 2.1 多糖 | 第13页 |
| 2.2 多糖的生物学功能 | 第13-16页 |
| 2.2.1 生命体结构的组成成分 | 第14页 |
| 2.2.2 抗肿瘤作用 | 第14页 |
| 2.2.3 抗氧化作用 | 第14-15页 |
| 2.2.4 降血糖、降血脂作用 | 第15-16页 |
| 3 多糖的提取、分离与纯化 | 第16-17页 |
| 3.1 多糖的提取 | 第16页 |
| 3.2 多糖的分离与纯化 | 第16-17页 |
| 4 多糖的降解 | 第17-18页 |
| 5 凝胶色谱法测定多糖相对分子量 | 第18-19页 |
| 6 硫酸酯化多糖及其生物学活性 | 第19-21页 |
| 6.1 硫酸酯化多糖 | 第19-20页 |
| 6.2 硫酸酯化多糖的功能活性 | 第20-21页 |
| 6.2.1 抗凝血 | 第20页 |
| 6.2.2 抗病毒 | 第20-21页 |
| 7 硫酸酯化多糖抗肿瘤机制的研究 | 第21-23页 |
| 7.1 诱导肿瘤凋亡 | 第21-22页 |
| 7.2 增强机体的免疫力 | 第22页 |
| 7.3 抑制血管生成 | 第22页 |
| 7.4 提高对肿瘤细胞化疗药物的增敏作用 | 第22-23页 |
| 8 钙离子通道与肿瘤细胞 | 第23-25页 |
| 8.1 胞内钙离子浓度调节的机制 | 第23-24页 |
| 8.1.1 钙离子跨质膜转运 | 第23页 |
| 8.1.2 钙离子跨细胞器膜转运 | 第23-24页 |
| 8.2 钙通道与肿瘤细胞 | 第24-25页 |
| 9. 核磁共振技术 | 第25-26页 |
| 第二章 马尾松花粉多糖的提取、纯化以及相对分子量的测定 | 第26-33页 |
| 1 材料与试剂 | 第26页 |
| 2 仪器与设备 | 第26-27页 |
| 3 方法步骤 | 第27-29页 |
| 3.1 马尾松花粉多糖的提取 | 第27-28页 |
| 3.1.1 马尾松花粉多糖的初步提取 | 第27页 |
| 3.1.2 透析法除去小分子杂质 | 第27页 |
| 3.1.3 三氯乙酸法去除杂蛋白 | 第27页 |
| 3.1.4 松花粉多糖的多级沉淀 | 第27-28页 |
| 3.2 马尾松花粉多糖含量的测定 | 第28页 |
| 3.2.1 苯酚—硫酸法测定马尾松花粉多糖的含量 | 第28页 |
| 3.2.2 马尾松花粉多糖样品含量的测定 | 第28页 |
| 3.3 马尾松花粉多糖相对分子量的测定 | 第28-29页 |
| 3.3.1 色谱条件 | 第28页 |
| 3.3.2 右旋糖酐标准品溶液及待测糖溶液的制备 | 第28-29页 |
| 3.3.3 标准曲线的绘制及PPM80-B分子量的测定 | 第29页 |
| 4 实验结果 | 第29-31页 |
| 4.1 马尾松花粉多糖的得率 | 第29页 |
| 4.2 马尾松花粉多糖含量的测定 | 第29-30页 |
| 4.3 PPM80-B组分相对分子量的测定 | 第30-31页 |
| 5 讨论 | 第31-33页 |
| 第三章 多糖的降解及硫酸酯化 | 第33-37页 |
| 1 材料与试剂 | 第33页 |
| 2 实验仪器与设备 | 第33页 |
| 3 实验步骤 | 第33-35页 |
| 3.1 松花粉多糖PPM80-B的降解 | 第33-34页 |
| 3.2 DPPM80-B相对分子量的测定 | 第34页 |
| 3.3 多糖的硫酸酯化 | 第34-35页 |
| 3.3.1 氯磺酸-吡啶法制备硫酸酯化多糖 | 第34页 |
| 3.3.2 硫酸酯化多糖硫酸根取代度的鉴定 | 第34-35页 |
| 4 实验结果 | 第35-36页 |
| 4.1 DPPM80-B相对分子量的测定 | 第35页 |
| 4.2 计算硫酸根取代度 | 第35-36页 |
| 5 讨论 | 第36-37页 |
| 第四章 马尾松花粉多糖对人肝癌细胞HepG2增殖的影响 | 第37-42页 |
| 1 材料与试剂 | 第37页 |
| 1.1 细胞株 | 第37页 |
| 1.2 药物与试剂 | 第37页 |
| 2 仪器与设备 | 第37-38页 |
| 3 实验步骤 | 第38页 |
| 3.1 HepG2细胞的常规培养 | 第38页 |
| 3.2 MTT法检测松花粉多糖对HepG2增殖的影响 | 第38页 |
| 3.3 统计分析 | 第38页 |
| 4 实验结果 | 第38-40页 |
| 5 讨论 | 第40-42页 |
| 第五章 马尾松花粉多糖对肝癌细胞HepG2的[Ca~(2+)]_i的影响 | 第42-46页 |
| 1 材料与试剂 | 第42-43页 |
| 1.1 细胞株 | 第42页 |
| 1.2 药物与试剂 | 第42页 |
| 1.3 仪器与设备 | 第42-43页 |
| 2 实验步骤 | 第43-44页 |
| 2.1 试剂的配置 | 第43页 |
| 2.1.1 Fura-2/AM溶液 | 第43页 |
| 2.1.2 F127溶液 | 第43页 |
| 2.2 肝癌细胞HepG2的[Ca~(2+)]_i的测定 | 第43-44页 |
| 2.3 统计分析 | 第44页 |
| 3 实验结果 | 第44页 |
| 4 讨论 | 第44-46页 |
| 第六章 核磁共振波谱法解析松花粉多糖的结构 | 第46-51页 |
| 1 材料与试剂 | 第46页 |
| 2 仪器与设备 | 第46页 |
| 3 实验步骤 | 第46页 |
| 4 实验结果 | 第46-49页 |
| 4.1 ~1HNMR图谱 | 第46-48页 |
| 4.2 ~(13)CNMR图谱 | 第48-49页 |
| 5 讨论 | 第49-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-56页 |
