| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-24页 |
| 1.1 引言 | 第14页 |
| 1.2 多环芳烃污染 | 第14-17页 |
| 1.2.1 环境中PAHs的来源及分布 | 第14-16页 |
| 1.2.2 多环芳烃的危害 | 第16页 |
| 1.2.3 环境中PAHs的污染现状 | 第16页 |
| 1.2.4 多环芳烃污染治理现状 | 第16-17页 |
| 1.3 植物内生细菌研究现状 | 第17-19页 |
| 1.3.1 植物内生细菌 | 第17页 |
| 1.3.2 植物内生细菌的作用 | 第17-18页 |
| 1.3.3 植物内生细菌的分离筛选及鉴定 | 第18-19页 |
| 1.4 降解PAHs的植物内生细菌研究现状 | 第19-22页 |
| 1.4.1 功能植物内生细菌对PAHs的降解 | 第19-20页 |
| 1.4.2 具有PAHs降解功能的植物内生细菌在植物体内的定殖 | 第20-21页 |
| 1.4.3 功能植物内生细菌调控植物体内PAHs的降解机制 | 第21页 |
| 1.4.4 植物内生细菌与植物联合修复治理PAHs污染 | 第21-22页 |
| 1.5 问题与展望 | 第22页 |
| 1.6 研究目标、主要内容及技术路线 | 第22-24页 |
| 第二章 具有芘降解功能的植物内生细菌PW7的分离筛选及生物学特性 | 第24-36页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-27页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 2.1.2 功能植物内生细菌的分离筛选 | 第25页 |
| 2.1.3 菌悬液制备 | 第25页 |
| 2.1.4 功能植物内生细菌的生物学特性 | 第25页 |
| 2.1.4.1 菌株PW7的形态学特征 | 第25页 |
| 2.1.4.2 菌株PW7的生理生化特性 | 第25页 |
| 2.1.5 功能植物内生细菌的鉴定 | 第25-26页 |
| 2.1.6 功能植物内生细菌PW7的生长曲线 | 第26页 |
| 2.1.7 环境因子对降解菌株PW7生长的影响 | 第26页 |
| 2.1.8 测定方法 | 第26页 |
| 2.1.9 数据分析 | 第26-27页 |
| 2.2 结果与分析 | 第27-33页 |
| 2.2.1 功能植物内生细菌的筛选与鉴定 | 第27-30页 |
| 2.2.1.1 菌株PW7的形态观察及生理生化特性 | 第27-29页 |
| 2.2.1.2 菌株16S rDNA序列同源性分析 | 第29-30页 |
| 2.2.2 菌株PW7的生长曲线 | 第30页 |
| 2.2.3 环境因子对菌株PW7生长的影响 | 第30-33页 |
| 2.2.3.1 pH对菌株PW7生长的影响 | 第31页 |
| 2.2.3.2 盐浓度对菌株PW7生长的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.3.3 通气量对菌株PW7生长的影响 | 第32页 |
| 2.2.3.4 温度对菌株PW7生长的影响 | 第32-33页 |
| 2.3 结论 | 第33-36页 |
| 第三章 菌株PW7对芘的降解效能及降解条件优化 | 第36-44页 |
| 3.1 材料与方法 | 第36-38页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第36页 |
| 3.1.2 菌悬液制备 | 第36页 |
| 3.1.3 菌株PW7的降解动力学曲线 | 第36页 |
| 3.1.4 环境条件对菌株PW7生长及芘降解的影响 | 第36-37页 |
| 3.1.5 污染强度对菌株PW7生长及芘降解的影响 | 第37页 |
| 3.1.6 接种量对菌株PW7生长及芘降解的影响 | 第37页 |
| 3.1.7 不同碳氮源对菌株PW7降解效能的影响 | 第37页 |
| 3.1.8 测定方法 | 第37页 |
| 3.1.9 数据分析 | 第37-38页 |
| 3.2 结果与分析 | 第38-42页 |
| 3.2.1 菌株PW7降解动力学曲线 | 第38页 |
| 3.2.2 环境条件对菌株PW7降解效能的影响 | 第38-40页 |
| 3.2.2.1 温度对菌株PW7降解效能的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.2.2 pH对菌株PW7降解效能的影响 | 第39-40页 |
| 3.2.3 污染强度对菌株PW7降解效能的影响 | 第40页 |
| 3.2.4 接种量对菌株PW7降解效能的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.5 不同碳氮源对菌株PW7降解效能的影响 | 第41-42页 |
| 3.3 结论 | 第42-44页 |
| 第四章 菌株PW7在小麦体内的定殖特性初探 | 第44-58页 |
| 4.1 材料与方法 | 第44-47页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第44页 |
| 4.1.2 小麦水培试验 | 第44-46页 |
| 4.1.2.1 抗性试验 | 第45页 |
| 4.1.2.2 降解菌株抗性标记 | 第45页 |
| 4.1.2.3 芘污染霍格兰营养液配置 | 第45页 |
| 4.1.2.4 小麦侵染方法 | 第45-46页 |
| 4.1.3 小麦生物量测定 | 第46页 |
| 4.1.4 接种菌株数量测定 | 第46页 |
| 4.1.5 植物体内芘的提取与测定 | 第46-47页 |
| 4.1.6 培养液中芘的提取与测定 | 第47页 |
| 4.1.7 测定方法 | 第47页 |
| 4.1.8 数据处理 | 第47页 |
| 4.2 结果与分析 | 第47-56页 |
| 4.2.1 菌株PW7对抗生素的抗性 | 第47-48页 |
| 4.2.2 小麦体内菌株PW7的分布 | 第48-49页 |
| 4.2.3 菌株PW7对小麦生物量的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.4 培养液中芘浓度及去除 | 第50-52页 |
| 4.2.5 植物体内中芘浓度 | 第52-53页 |
| 4.2.6 植物体内中芘的积累量 | 第53-54页 |
| 4.2.7 植物体内芘的富集系数及传导系数 | 第54-56页 |
| 4.3 结论 | 第56-58页 |
| 第五章 总结与展望 | 第58-60页 |
| 5.1 总结 | 第58-59页 |
| 5.2 创新点 | 第59页 |
| 5.3 展望 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-72页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74-76页 |
| 附录 | 第76-79页 |
