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血红素加氧酶/一氧化碳和氢气调控小麦糊粉层细胞α-淀粉酶基因表达以及细胞程序性死亡的分子机理

摘要第1-11页
ABSTRACT第11-14页
缩略词表第14-16页
第一章 文献综述第16-38页
 第一节 禾谷类糊粉层细胞α-淀粉酶的研究进展第16-19页
  1 糊粉层细胞对ABA和GA的响应第16页
  2 糊粉层细胞α-淀粉酶的信号转导第16-19页
   ·Ca~(2+)/CAM依赖和不依赖的信号转导第16-17页
   ·cGMP参与诱导的α-淀粉酶第17页
   ·异源三聚体G蛋白参与诱导的α-淀粉酶第17-18页
   ·蛋白激酶级联反应第18页
   ·基因转录水平的调控第18-19页
 第二节 禾谷类糊粉层细胞PCD的研究进展第19-22页
  1 糊粉层细胞PCD发生过程的形态变化第19-20页
  2 糊粉层细胞中ROS的来源第20-21页
  3 ROS对糊粉层细胞PCD的影响第21-22页
 第三节 血红素加氧酶/一氧化碳信号系统的研究进展第22-28页
  1 动物中HO的功能及其信号转导第22-23页
  2 植物中HO的研究进展第23-24页
  3 植物中HO/CO信号系统的功能及其信号转导第24-28页
   ·HO/CO对植物生长发育的调控第24-26页
   ·HO调节植物对逆境的响应第26-27页
   ·植物HO的信号转导第27-28页
 第四节 一氧化氮的研究进展第28-32页
  1 植物中NO合成的途径第28-29页
  2 NO的生理功能第29-30页
  3 NO在植物中的信号转导第30-32页
 第五节 氢气的研究进展第32-35页
  1 H_2在动物中的研究进展第32-33页
  2 H_2在植物中的研究进展第33-35页
 第六节 本研究的目的和意义第35-36页
 第七节 研究思路第36-38页
第二章 血红素加氧酶-1介导NO/cGMP在GA诱导的小麦糊粉层中对α-Amy2/54基因的诱导表达第38-58页
 摘要第38-39页
 引言第39-41页
 第一节 材料与方法第41-44页
  1 试剂第41页
  2 CO溶液的制备第41页
  3 小麦糊粉层的制备第41-42页
  4 血红素加氧酶的活性测定第42页
  5 α-淀粉酶的活性测定第42页
  6 琼脂平板测定淀粉酶活性第42页
  7 小麦HO-1的Western blot第42-43页
  8 Greiss试剂法测定NO的含量第43页
  9 定量RT-PCR检测第43页
  10 统计分析第43-44页
 第二节 结果与分析第44-56页
  1 SNP和NONOate以GA依赖的方式上调α-淀粉酶活性第44-45页
  2 SNP诱导的α-Amy2/54的上调表达,α-淀粉酶活性以及NO的含量上升被cPTIO抑制第45-47页
  3 8-Br-cGMP具有和SNP相类似的作用第47-48页
  4 SNP和8-Br-cGMP的诱导效应被ZnPPIX抑制,CO逆转ZnPPIX的抑制效应第48-49页
  5 HO-1/CO具有和SNP以及8-Br-cGMP相类似的作用第49-50页
  6 cPTIO和LY83583抑制SNP诱导的HO-1的基因表达以及HO的活性第50-51页
  7 cGMP诱导HO-1的表达第51-52页
  8 GAMYB和PKABA1表达第52-56页
 第三节 讨论第56-58页
第三章 血红素加氧酶-1通过调控H_2O_2代谢延缓GA诱导的小麦糊粉层细胞PCD第58-80页
 摘要第58-59页
 引言第59-61页
 第一节 材料与方法第61-64页
  1 试剂第61页
  2 材料培养第61页
  3 耗氧量测定第61页
  4 细胞存活率第61-62页
  5 CO饱和水溶液的制备第62页
  6 HO和抗氧化酶活性测定第62页
  7 α-淀粉酶的活性测定第62页
  8 H_2O_2含量测定第62-63页
  9 HO-1的Western印迹第63页
  10 总RNA的提取和半定量RT-PCR第63页
  11 统计分析第63-64页
 第二节 结果与分析第64-76页
  1 ABA抑制,GA促进小麦糊粉层细胞的PCD第64-65页
  2 HO-1诱导剂Hematin和CO延缓GA诱导的PCD第65-68页
  3 下调HO活性加速小麦糊粉层细胞PCD的发生第68-70页
  4 三种抗氧化剂能模拟Ht和CO的作用上调HO的活性和基因表达第70页
  5 内源H_2O_2的含量调控小麦糊粉层细胞的PCD第70-72页
  6 胆红素(BR)、二价铁离子(Fe~(2+))对两种抗氧化酶、细胞存活率以及内源H_2O_2含量的影响第72-75页
  7 α-淀粉酶活性的变化第75-76页
 第三节 讨论第76-80页
第四章 钴通过调控HO-1延缓GA诱导的小麦糊粉层细胞的PCD第80-98页
 摘要第80-81页
 引言第81-82页
 第一节 材料与方法第82-85页
  1 试剂第82页
  2 糊粉层制备第82页
  3 细胞死亡率统计第82页
  4 耗氧量测定第82页
  5 HO活性测定和HO-1的western blot第82-83页
  6 α-淀粉酶活性测定第83页
  7 CAT、APX和SOD酶活性测定第83页
  8 H_2O_2含量和O_2~(·-)产生速率测定第83页
  9 组织化学染色分析H_2O_2和O_2~(·-)第83-84页
  10 定量RT-PCR检测第84页
  11 统计分析第84-85页
 第二节 结果与分析第85-96页
  1 CoCl_2和CoPPIX预处理延缓GA诱导的小麦糊粉层细胞的PCD第85页
  2 CoCl_2和CoPPIX预处理对耗氧量和α-淀粉酶的活性的影响第85-87页
  3 COCl_2和CoPPIX预处理上调HO-1的基因表达第87-88页
  4 下调HO表达加速小麦糊粉层细胞的PCD第88-90页
  5 HO的下调导致O_2~(·-)产生和累积增加第90-91页
  6 HO上调降低内源H_2O_2的水平第91-94页
  7 DPI和DMTU延缓GA诱导的糊粉层细胞PCD第94-96页
 第三节 讨论第96-98页
第五章 氢气延缓活性氧/活性氮诱导的小麦糊粉层细胞的PCD第98-116页
 摘要第98-99页
 引言第99-100页
 第一节 材料与方法第100-103页
  1 试剂第100页
  2 糊粉层和原生质体的制备第100页
  3 细胞死亡率统计第100页
  4 耗氧量第100页
  5 HO活性测定和HO-1western blot第100页
  6 TBARS含量测定第100-101页
  7 利用LSCM分析ROS的含量第101页
  8 CAT、APX和SOD酶活性测定第101页
  9 H_2O_2含量和O_2~(·-)产生速率测定第101页
  10 组织化学染色分析H_2O_2和O_2~(·-)第101页
  11 电子顺磁共振测定·OH含量第101-102页
  12 氢气饱和溶液制备第102页
  13 氢气含量测定第102页
  14 α-淀粉酶的活性测定第102页
  15 定量RT-PCR检测第102页
  16 统计分析第102-103页
 第二节 结果与分析第103-114页
  1 GA处理降低糊粉层中内源H_2的含量第103-104页
  2 H_2延缓GA诱导的小麦糊粉层细胞的PCD第104-106页
  3 H_2通过调控O_2~(·-),H_20_2的变化降低ROS造成的氧化伤害第106-107页
  4 H_2降低糊粉层细胞原生质体内的ROS含量第107-110页
  5 H_2提高ABA、GA处理抗氧化酶基因表达和活性第110-111页
  6 H_2减少羟自由基诱导的PCD第111-112页
  7 H_2抑制ONOO~-诱导的PCD第112-114页
 第三节 讨论第114-116页
全文结论第116-118页
创新之处与展望第118-120页
参考文献第120-140页
附表Ⅰ第140-141页
附表Ⅱ第141-142页
攻读学位期间发表或待发表的研究论文第142-144页
致谢第144页

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